НЕЙРОІМУННІ ЗМІНИ В РАННІЙ ДІАГНОСТИЦІ ВІЛ-ІНФЕКЦІЇ

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.11603/1681-2727.2021.3.12497

Ключові слова:

діагностика, нейро-СНІД, нейро­специфічні білки

Анотація

Мета – вивчення впливу нейроспецифічних білків на розвиток нейро-СНІДу, встановлення перспектив їх визначення з метою ранньої діагностики ВІЛ-інфекції.

У дослідженні використовували теоретичні методи, які включали аналіз та синтез вивчення сучасних світових наукових публікацій та клінічних спостережень, дедуктивно-індуктивні методи.

Висновки. В Україні, як і у всьому світі, відбувається активне поширення та пізнє виявлення ВІЛ-інфекції. Стандартні методи лабораторної діагностики не можуть забезпечити якісну ранню діагностику хвароби.

Швидке проникнення вірусу у центральну нервову систему (ЦНС) створює труднощі для диференційної діагностики з подальшим формуванням стійкості до антиретровірусних препаратів. Поки ВІЛ у крові залишається протягом тривалого прихованого періоду, збудник активно реплікується у клітинах мозку і призводить до розвитку нейро-СНІДу.

Зв’язки та особливості накопичення матриксу ВІЛ-білка р-17 у ЦНС, активність транскрипційного трансактиватора, регуляторного білка Vpr залишаються недостатньо вивченими. Нейроспецифічні білки як маркери вірусного патологічного процесу у нервовій системі людини потребують особливої уваги та вивчення.

Перегляд основ ранньої діагностики ВІЛ-інфекції дасть можливості посилити епідеміологічний контроль та запобігати новим випадкам хвороби, що у підсумку приведе до зменшення фінансового навантаження щодо цієї проблеми не лише в Україні, а й у багатьох країнах світу.

Біографії авторів

М. Д. Чемич, Сумський державний університет

доктор медичних наук, професор, Сумський державний університет, завідувач кафедри інфекційних хвороб з епідеміологією

Д. С. Сосновенко, Сумський державний університет

аспірант, викладач-стажист, Сумський державний університет

С. М. Янчук, Сумський державний університет

викладачка-стажистка, Сумський державний університет

Посилання

Chemych, M.D., Sosnovenko, D.S., Chemych, O.M., Berest, O.B. (2020). Hematological changes of endogenic intoxication, non-specific reactivity and inflammation activity indices in hiv-infected patients. Wiadomosci Lekarskie, 73 (5), 983-987. DOI: 10.36740/WLek202005127

Chernii, T.V. (2020). The role of cholinergic insufficiency in cognitive impairment among patients with chronic cerebral ischemia. Wiadomosci Lekarskie, 73 (5), 857-863. Retrieved from: www.scopus.com

Vasylyeva, T.I., Liulchuk, M., Du Plessis, L., Fearnhill, E., Zadorozhna, V., Babii, N., Faria, N.R. (2019). The changing epidemiological profile of HIV-1 subtype B epidemic in Ukraine. AIDS Research and Human Retroviruses, 35 (2), 155-163. DOI:10.1089/aid.2018.0167

World Health Organization: website. URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/hiv-aids (Last accessed: 12.01.2021).

Kaur, N., Dendukuri, N., Fellows, L.K., Brouillette, M., & Mayo, N. (2020). Association between cognitive reserve and cognitive performance in people with HIV: A systematic review and meta-analysis. AIDS Care – Psychological and Socio-Medical Aspects of AIDS/HIV, 32 (1), 1-11. DOI:10.1080/09540121.2019.1612017

Heithoff, A.J., Totusek, S.A., Le, D., Barwick, L., Gensler, G., Franklin, D.R., & Fox, H.S. (2019). The integrated national NeuroAIDS tissue consortium database: A rich platform for neuroHIV research. Database, 2019 DOI:10.1093/database/bay134

State institution “Public Health Center of the Ministry of Health of Ukraine”, 2020: website. Retrieved from: https://phc.org.ua/kontrol-zakhvoryuvan/vilsnid/statistika-z-vilsnidu (Last accessed: 12.01.2021).

Kuzin, I., & Martzynovska, V. HIV-infection in Ukraine 2019 State Institution ”Public Health Center of the Ministry of Health of Ukraine”, 50. 6-16.

Thaney, V.E., & Kaul, M. (2019). Type i interferons in NeuroHIV. Viral Immunology, 32 (1), 7-14. DOI:10.1089/vim.2018.0085

Priyanka, Wadhwa, R., Chaudhuri, R., Nag, T.C., & Seth, P. (2020). Novel role of mortalin in attenuating HIV-1 tat-mediated astrogliosis. Journal of Neuroinflammation, 17 (1). DOI:10.1186/s12974-020-01912-3

Liu, Y., Niu, Y., Li, L., Timani, K.A., He, V.L., Sanborn, C., He, J.J. (2019). Correction to: Tat expression led to increased histone 3 tri-methylation at lysine 27 and contributed to HIV latency in astrocytes through regulation of MeCP2 and Ezh2 expression. NeuroVirology, (2019), 25, 4, (508-519), 10.1007/s13365-019-00751-0). Journal of Neurovirology, 25 (6), 901. doi:10.1007/s13365-019-00766-7

Barat, C., Proust, A., Deshiere, A., Leboeuf, M., Drouin, J., & Tremblay, M. J. (2018). Astrocytes sustain long-term productive HIV-1 infection without establishment of reactivable viral latency. Glia, 66(7), 1363-1381. DOI:10.1002/glia.23310

Chauhan, A. (2015). Enigma of HIV-1 latent infection in astrocytes: An in-vitro study using protein kinase C agonist as a latency reversing agent. Microbes and Infection, 17(9), 651-659. DOI:10.1016/j.micinf.2015.05.006

Fan, Y., & He, J. J. (2016). HIV-1 tat promotes lysosomal exocytosis in astrocytes and contributes to astrocyte-mediated tat neurotoxicity. Journal of Biological Chemistry, 291 (43), 22830-22840. DOI:10.1074/jbc.M116.731836

Gray, L.R., Cowley, D., Crespan, E., Welsh, C., Mackenzie, C., Wesselingh, S.L., Churchill, M.J. (2013). Reduced basal transcriptional activity of central nervous system-derived HIV type 1 long terminal repeats. AIDS Research and Human Retroviruses, 29 (2), 365-370. DOI:10.1089/aid.2012.0138

Reis, dos R.S., Sant, S., Keeney, H., Wagner, M.C.E., & Ayyavoo, V. (2020). Modeling HIV-1 neuropathogenesis using three-dimensional human brain organoids (hBORGs) with HIV-1 infected microglia. Scientific Reports, 10 (1). DOI:10.1038/s41598-020-72214-0

Walsh, J.G., Reinke, S.N., Mamik, M.K., McKenzie, B.A., Maingat, F., Branton, W.G., & Power, C. (2014). Rapid inflammasome activation in microglia contributes to brain disease in HIV/AIDS. Retrovirology, 11 (1). DOI:10.1186/1742-4690-11-35

Janssen, R.S., Cornblath, D.R., Epstein, L.G., Foa, RP., McArthur, J.C., & Price, R.W., American Academy of Neurology AIDS Task Force. (1991). Nomenclature and research case definitions for neurologic manifestations of human immunodeficiency virus-type 1 (HIV-1) infection. Neurology, 41 (6), 778-785. DOI:10.1212/wnl.41.6.778

Russell, R.A., Chojnacki, J., Jones, D.M., Johnson, E., Do, T., Eggeling, C., & Sattentau, Q.J. (2017). Astrocytes resist HIV-1 fusion but engulf infected macrophage material. Cell Reports, 18 (6), 1473-1483. DOI:10.1016/j.celrep.2017.01.027

Buyukturkoglu, K., Fleyser, L., Byrd, D., Morgello, S., & Inglese, M. (2018). Diffusion kurtosis imaging shows similar cerebral axonal damage in patients with HIV infection and multiple sclerosis. Journal of Neuroimaging, 28 (3), 320-327. DOI:10.1111/jon.12497

Green, M. V., & Thayer, S. A. (2016). NMDARs adapt to neurotoxic HIV protein tat downstream of a GluN2A–ubiquitin ligase signaling pathway. Journal of Neuroscience, 36 (50), 12640-12649. DOI:10.1523/JNEUROSCI.2980-16.2016

Kukhanova, M.K., Karpenko, I.L., & Ivanov, A.V. (2020). DEAD-box RNA helicase DDX3: Functional properties and development of DDX3 inhibitors as antiviral and anticancer drugs. Molecules, 25 (4) DOI:10.3390/molecules25041015

Saribas, A.S., Coric, P., Hamazaspyan, A., Davis, W., Axman, R., White, M.K., Safak, M. (2016). Emerging from the unknown: Structural and functional features of agnoprotein of polyomaviruses. Journal of Cellular Physiology, 231 (10), 2115-2127. DOI:10.1002/jcp.25329

Zhao, X., Fan, Y., Vann, P.H., Wong, J.M., Sumien, N., & He, J.J. (2020). Long-term HIV-1 tat expression in the brain led to neurobehavioral, pathological, and epigenetic changes reminiscent of accelerated aging. Aging and Disease, 11 (1), 93-107. DOI:10.14336/AD.2019.0323

Zou, S., Balinang, J.M., Paris, J.J., Hauser, K.F., Fuss, B., & Knapp, P.E. (2019). Effects of HIV-1 tat on oligodendrocyte viability are mediated by CaMKIIβ–GSK3β interactions. Journal of Neurochemistry, 149 (1), 98-110. DOI:10.1111/jnc.14668

Levy J.A. HIV and the pathogenesis of AIDS. USA: American Society for Microbiology, 2007. ISBN 978-1-55581-393-2

Jha, N.K., Sharma, A., Jha, S.K., Ojha, S., Chellappan, D.K., Gupta, G. Singh, S.K. (2020). Alzheimer’s disease-like perturbations in HIV-mediated neuronal dysfunctions: Understanding mechanisms and developing therapeutic strategies: HIV and AD relationship. Open Biology, 10 (12) DOI:10.1098/rsob.200286rsob200286

Ojeda-Juárez, D., Shah, R., Fields, J.A., Harahap-Carrillo, I.S., Koury, J., Maung, R., Kaul, M. (2020). Lipocalin-2 mediates HIV-1 induced neuronal injury and behavioral deficits by overriding CCR5-dependent protection. Brain, Behavior, and Immunity, 89, 184-199. DOI:10.1016/j.bbi.2020.06.016

Strebel, H., Haller, B., Sohn, M., Schepp, W., & Gundling, F. (2020). Role of brain biomarkers S-100-beta and neuron-specific enolase for detection and follow-up of hepatic encephalopathy in cirrhosis before, during and after treatment with L-ornithine-L-aspartate. GE Portuguese Journal of Gastroenterology, 27 (6), 391-403. DOI:10.1159/000507225

Galina, G.Yu., Poponnikova, T.V., & Vavin G.V. (2008). Neuron-specific enolase and block NS-100, which are possible markers of nervous system damage in patients with hospitable key neuroinfections. Siberian Medical Journal, 82 (7), 29-31 [in Russian].

##submission.downloads##

Опубліковано

2021-11-29

Як цитувати

Чемич, М. Д., Сосновенко, Д. С., & Янчук, С. М. (2021). НЕЙРОІМУННІ ЗМІНИ В РАННІЙ ДІАГНОСТИЦІ ВІЛ-ІНФЕКЦІЇ. Інфекційні хвороби, (3), 68–74. https://doi.org/10.11603/1681-2727.2021.3.12497

Номер

Розділ

Огляди та лекції