Субмікроскопічні зміни рогівки при її змодельованій механічній непроникаючій травмі

С. М. ШМИР; Н. В. ОГІНСЬКА

doi:10.11603/2414-4533.2023.3.14153

Автор(и)

С. М. ШМИР Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України
Н. В. ОГІНСЬКА Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

DOI:

https://doi.org/10.11603/2414-4533.2023.3.14153

Ключові слова:

рогівка, механічна травма, електронномікроскопічні дослідження

Анотація

Мета роботи: встановити субмікроскопічні зміни рогівки за умов нанесення механічної непроникаючої травми рогівки.

Матеріали і методи. Експеримент моделювали на статевозрілих кролях породи шиншила. Тварин поділили на дві дослідні групи: перша – інтактна група тварин, друга – тварини із змодельованою непроникаючою механічною травмою рогівки. Кролям другої групи у верхній половині рогівки обох очей під місцевою анестезією наносили концентричну епітеліальну насічку, в межах якої одноразовим офтальмологічним скальпелем видаляли передній епітелій разом із верхнім шаром строми рогівки. Піддослідних тварин виводили із експерименту на 3, 7, 14 і 28 доби. Забір матеріалу для електронномікроскопічних досліджень проводили відповідно до загальноприйнятої методики. Ультратонкі зрізи, виготовлені на ультрамікротомі LKB 4801 A, контрастували ураніацетатом та цитратом свинцю відповідно до методу Рейнольдса і вивчали в електронному мікроскопі ПЕМ – 125 К.

Результати досліджень та їх обговорення. Субмікроскопічні дослідження показали, що через 3 доби після змодельованої механічної непроникаючої травми рогівки спостерігається поліморфізм епітеліоцитів переднього епітелію із різним ступенем альтеративних змін. У деструктивно зміненій власній речовині рогівки спостерігалися розволокнення, фрагментація колагенових фібрил у складі сполучнотканинних пластинок. Через 7 діб досліду встановлено, що у периферійних ділянках епітеліоцити втратили своє пошарове розташування, але у цитоплазмі клітин виявлялися помірно дистрофічно змінені органели. Сполучнотканинні пластинки строми рогівки дезорганізовані, виявляються ділянки фрагментації колагенових волокон. Через 14 діб після змодельованої травми рогівки у епітеліоцитах проявлялися ознаки деструктивних та регенераторних процесів. У власні речовині у даний термін експерименту відзначається формування грануляцій. Через 28 діб після моделювання механічної непроникаючої травми рогівки встановлено, що епітеліоцити багатошарового плоского незроговілого епітелію розташовані невпорядковано, міжклітинні простори значно розширені, елетроннопросвітлені. Власна речовина рогівки підлягає деструктивним і дегенеративним змінам, що проявляються значним розволокненням, фрагментацією колагенових волокон.

Посилання

Kronschläger, M.N., Talebizadeh, Yu, Z., Meyer, L.M., & Löfgren, S. (2015). Apoptosis in rat cornea after in vivo exposure to ultraviolet radiation at 300 nm. Cornea, 34(8), 945-949. DOI: https://doi.org/10.1097/ICO.0000000000000498

Wilson, S.E. (2020). Corneal wound healing. Exp Eye Res. DOI: https://doi.org/10.1016/j.exer.2020.108089

Lovald, S. T., Rau, A., Nissman, S., Ames, N., McNulty, J., Ochoa, J. A., & Baldwinson, M. (2017). Finite element analysis and experimental evaluation of penetrating injury through the cornea. Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials, 66, 104-110. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jmbbm.2016.11.001

Belknap, E. B. (2015). Corneal emergencies. Topics in Companion Animal Medicine, 30 (3), 74-80. DOI: https://doi.org/10.1053/j.tcam.2015.07.006

Slobodian, O.M., Vovk, O.Iu., Chelpanova, I.V., Hnidyk, Yu.V. (2022). Morfofunktsionalni osoblyvosti strukturnykh komponentiv ochnoho yabluka v porivnialno-vydovomu aspekti ta pry riznykh patolohichnykh protsesakh (ohliadova stattia) [Morpho-functional features of the structural components of the eyeball in a comparative-species aspect and in various pathological processes (review article)]. Morfolohiia – Morphology, 16 (3), 7-14 [in Ukrainian].

Barrientez, B., Nicholas, S. E., Whelchel, A., Sharif, R., Hjortdal, J., & Karamichos, D. (2019). Corneal injury: Clinical and molecular aspects. Experimental Eye Research, 186, 107709. DOI: https://doi.org/10.1016/j.exer.2019.107709

Ebenezar, O.O., Roney, A., Goswami, D.G., Petrash, J.M., Sledge, D., Komáromy, A.M., ... & Tewari-Singh, N. (2023). Ocular injury progression and cornea histopathology from chloropicrin vapor exposure: Relevant clinical biomarkers in mice. Experimental Eye Research, 230, 109440. DOI: https://doi.org/10.1016/j.exer.2023.109440

Turchyn, M.V., Volkov, K.S., Klishch, I.M., & Borys, R.M. (2016). Histolohichne i elektronno-mikroskopichne doslidzhennia keratoksenoimplantata pry riznykh vydakh konservatsii [Histological and electron microscopic examination of keratoxenoimplant with different types of preservation]. Zdobutky klinichnoi i eksperymentalnoi medytsyny – Achievements of Clinical and Experimental Medicine, 25 (1), 73-77 [in Ukrainian]. DOI: https://doi.org/10.11603/1811-2471.2016.v25.i1.6033

Kozhemiakin, Yu.M. (2002). Naukovo-praktychni rekomendatsii z utrymannia laboratornykh tvaryn ta roboty z nymy [Scientific and practical recommendations for keeping laboratory animals and working with them]. Kyiv [in Ukrainian].

Goralskiy, L.P., Homich, V.Т., & Kononskiy, О.І. (2011). Fundamentals of histological technique and morphofunctional methods of research in norm and in pathology. Zhytomyr: Polissia [in Ukrainian]