ГУБКИ МЕДИЧНІ/ГЕМОСТАТИЧНІ ЯК СУЧАСНІ ПЕРСПЕКТИВНІ ЗАСОБИ ДЛЯ ЗУПИНКИ КРОВОТЕЧ ТА ЗАКРИТТЯ РАН

Автор(и)

  • B. V. Pavliuk Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України https://orcid.org/0000-0003-1276-0114
  • M. B. Chubka Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України https://orcid.org/0000-0002-5666-5496
  • T. A. Hroshovyi Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України https://orcid.org/0000-0002-6427-2158
  • V. V. Debrivskyj Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

DOI:

https://doi.org/10.11603/2312-0967.2022.2.13334

Ключові слова:

технологія, губки медичні, губки гемостатичні, кровотеча, абсорбційний матеріал

Анотація

Мета роботи. Узагальнення перспектив використання губок медичних/гемостатичних, особливості їх технології та методів контролю якості.

Матеріали і методи. У роботі використали методи пошуку інформації, аналізу статистичних даних і відомостей наукової літератури за період 2006–2021 років щодо губок медичних та перспектив їх використання.

Результати й обговорення. Незважаючи на створення та дослідження великої кількості губок медичних на основі желатину, хітозану, похідних целюлози, колагену та інших допоміжних речовин, а також клінічне доведення їхньої ефективності та необхідності використання, дані засоби все ще потребують вдосконалення та подальшого вивчення, а пошуки ідеальної основи для створення універсальної губки медичної все ще тривають.

Висновки. Розширення асортименту губок медичних та дослідження нових допоміжних речовин для їх виготовлення – перспективний напрям сучасної медицини та фармації.

Біографії авторів

B. V. Pavliuk, Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

д. філос. фармац., асистент кафедри управління та економіки фармації з технологією ліків

M. B. Chubka, Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

канд. фармац. наук, доцент кафедри фармації ФПО

T. A. Hroshovyi, Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

д. фармац. наук, завідувач кафедри управління та економіки фармації з технологією ліків

V. V. Debrivskyj, Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України

магістрант кафедри  управління  та  економіки  фармації  з  технологією  ліків

Посилання

Behrens AM, Sikorski MJ, Kofinas P. Hemostatic strategies for traumatic and surgical bleeding. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2013; 102(11): 4182-94.

Zhao X, Guo B, Wu H, Liang Y, Ma PX. Injectable antibacterial conductive nanocomposite cryogels with rapid shape recovery for noncompressible hemorrhage and wound healing. Nature Communications. 2018;9(1).

Yu P, Zhong W. Hemostatic materials in wound care. Burns Trauma. 2021;9: Article number: tkab019.

Gabay M. Absorbable hemostatic agents. American Journal of Health-System Pharmacy. 2006; 63(13): 1244-53.

Liu JY, Li Y, Hu Y, Cheng G, Ye E, Shen C, Xu FJ. Hemostatic porous sponges of cross-linked hyaluronic acid/cationized dextran by one self-foaming process. Materials Science and Engineering: C. 2018; 83:160-8.

Kabiri M, Emami SH, Rafinia M, Tahriri M. Preparation and characterization of absorbable hemostat crosslinked gelatin sponges for surgical applications. Current Applied Physics. 2011;11(3): 457-61.

Ikram S, Islamia JM. Chitosan & its derivatives: a review in recent innovations. Int. J. Pharm. Sci. Res. 2015;6(1): 14-30.

Kunio NR, Riha GM, Watson KM, Differding JA, Schreiber MA, Watters JM. Chitosan-based advanced hemostatic dressing is associated with decreased blood loss in a swine uncontrolled hemorrhage model. The American Journal of Surgery. 2013;205(5): 505-10.

Ban KA, Minei JP, Laronga C, Harbrecht BG, Jensen EH, Fry DE, Itani KM, Dellinger EP, Ko CY, Duane TM. American College of Surgeons and Surgical Infection Society: Surgical Site Infection Guidelines, 2016 Update. Journal of the American College of Surgeons. 2017;224(1): 59-74.

Bennett BL, Littlejohn L. Review of new topical hemostatic dressings for combat casualty care. Military Medicine. 2014;179(5): 497-514.

FDA consults surgical device experts on down-classing certain hemostatic agents [Internet]. Available from: https://www.medtechdive.com/news/fda-consults-surgical-device-experts-on-down-classing-certain-hemostatic-ag/555768/

Yan T, Cheng F, Wei X, Huang Y, He J. Biodegradable collagen sponge reinforced with chitosan/calcium pyrophosphate nanoflowers for rapid hemostasis. Carbohydrate Polymers. 2017;170: 271-80.

Kowalewski M, Pawliszak W, Zaborowska K, Navarese EP, Szwed KA, Kowalkowska ME, Kowalewski J, Borkowska A, Anisimowicz L. Gentamicin-collagen sponge reduces the risk of sternal wound infections after heart surgery: Meta-analysis. The Journal of Thoracic and Cardiovascular Surgery. 2015;149(6): 1631-40.

Grottke O, Braunschweig T, Daheim N, Coburn M, Grieb G, Rossaint R, Tolba R. Effect of TachoSil in a coagulopathic pig model with blunt liver injuries. Journal of Surgical Research. 2011;171(1): 234-9.

Simo KA, Hanna EM, Imagawa DK, Iannitti DA. Hemostatic Agents in Hepatobiliary and Pancreas Surgery: A Review of the Literature and Critical Evaluation of a Novel Carrier-Bound Fibrin Sealant (TachoSil). ISRN Surgery. 2012;2012: 1-12.

Rockwood DN, Preda RC, Yücel T, Wang X, Lovett ML, Kaplan DL. Materials fabrication from Bombyx mori silk fibroin. Nature Protocols. 2011;6(10):1612-31.

Yuan W, Chen Y, Wei Sun. Hemostatic absorbable gelatin sponge loaded with 5-fluorouracil for treatment of tumors. International Journal of Nanomedicine. 2013:1499-506.

Kabiri M, Emami SH, Rafinia M, Tahriri M. Preparation and characterization of absorbable hemostat crosslinked gelatin sponges for surgical applications. Current Applied Physics. 2011;11(3): 457-61.

Sun X, Tang Z, Pan M, Wang Z, Yang H, Liu H. Chitosan/kaolin composite porous microspheres with high hemostatic efficacy. Carbohydrate Polymers. 2017;177: 135-43.

Ngo DH, Vo TS, Ngo DN, Kang KH, Je JY, Pham HN, Byun HG, Kim SK. Biological effects of chitosan and its derivatives. Food Hydrocolloids. 2015;51: 200-16.

Hajosch R., Suckfuell M., Oesser S., Ahlers M., Flechsenhar K., Schlosshauer B. A novel gelatin sponge for accelerated hemostasis.. Nanoscale. 2018; 20234-45.

Yeh MK, Liang YM, Hu CS, Cheng KM, Hung YW, Young JJ, Hong PD. Studies on a Novel Gelatin Sponge: Preparation and Characterization of Cross-Linked Gelatin Scaffolds Using 2-Chloro-1-Methylpyridinium Iodide as a Zero-Length Cross-Linker. Journal of Biomaterials Science, Polymer Edition. 2012;23(7): 973-90.

Bhat R, Karim AA. Towards producing novel fish gelatin films by combination treatments of ultraviolet radiation and sugars (ribose and lactose) as cross-linking agents. Journal of Food Science and Technology. 2012;51(7): 1326-33.

Yang G, Xiao Z, Long H, Ma K, Zhang J, Ren X, Zhang J. Assessment of the characteristics and biocompatibility of gelatin sponge scaffolds prepared by various crosslinking methods. Scientific Reports. 2018;8(1).

Takagi T, Tsujimoto H, Torii H, Ozamoto Y, Hagiwara A. Two-layer sheet of gelatin: A new topical hemostatic agent. Asian Journal of Surgery.2018;41(2): 124-30.

Peng Y. Y., Glattauer V., Ramshaw J. A. M. Stabilisation of Collagen Sponges by Glutaraldehyde Vapour Crosslinking. International Journal of Biomaterials. 2017;2017: 1-6.

Santos TD, Abuna RP, Almeida AL, Beloti MM, Rosa AL. Effect of collagen sponge and fibrin glue on bone repair. Journal of Applied Oral Science. 2015;23(6): 623-8.

Deng AH, Chen AZ, Wang SB, Li Y, Liu YG, Cheng XX, Zhao Z, Lin DL. Porous nanostructured poly-l-lactide scaffolds prepared by phase inversion using supercritical CO2 as a nonsolvent in the presence of ammonium bicarbonate particles. J. Supercrit. Fluids. 2013;(77): 110-6.

Pavliuk B., Chubka M., Hroshovyi T., Stechyshyn I. Characteristics of structured medical/hemostatic sponges as a medical devices for stop bleeding and for close the wound. Pol Med J. 2020;288: 35-9.

Konstantelias AA, Polyzos KA, Falagas ME. Gentamicin-Collagen Sponges for the Prevention of Surgical Site Infections: A Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. Surgical Infections. 2016;17(5): 601-9.

Imani R, Rafienia M, Hojjati Emami S. Synthesis and characterization of glutaraldehyde-based crosslinked gelatin as a local hemostat sponge in surgery: An in vitro study. Bio-Medical Materials and Engineering. 2013;23(3): 211-24.

Achneck HE, Sileshi B, Jamiolkowski RM, Albala DM, Shapiro ML, Lawson JH. A Comprehensive Review of Topical Hemostatic Agents. Annals of Surgery. 2010;251(2): 217-28.

Wang H, Chen P. Surgicel® (oxidized regenerated cellulose) granuloma mimicking local recurrent gastrointestinal stromal tumor: A case report. Oncology Letters. 2013;5(5): 1497-500.

Sae-Jung S, Apiwatanakul P. Chitosan Pad, Cellulose Membrane, or Gelatin Sponge for Peridural Bleeding: An Efficacy Study on a Lumbar Laminectomized Rat Model. Asian Spine Journal. 2018;12(2): 195-201.

Hutchinson RW, George K, Johns D, Craven L, Zhang G, Shnoda P. Hemostatic efficacy and tissue reaction of oxidized regenerated cellulose hemostats. Cellulose. 2013;20(1): 537-45.

FDA Clears XSTAT Hemostatic Dressing For Civilian Use [Internet]. Available from: https://www.meddeviceonline.com/doc/fda-clears-xstat-hemostatic-dressing-for-civilian-use-0001

Chen Z, Han L, Liu C, Du Y. A rapid hemostatic sponge based on large, mesoporous silica nanoparticles and N-alkylated chitosan. Nanoscale. 2018;10(43): 20234-45.

Pua U. Application of gelatin sponge sandwich as a hemostatic aid to percutaneous suture-mediated arteriotomy closure. Journal of Vascular Surgery. 2013;57(2): 583-5.

Lorusso R, De Cicco G, Vizzardi E, Gelsomino S. Human Fibrinogen/Thrombin-Coated Collagen Patch to Control Intraoperative Severe Pulmonary Hemorrhage and Air Leakage After Correction of a Ruptured Thoracic Aortic Aneurysm. The Annals of Thoracic Surgery. 2011;91(3): 917-9.

Carol Tan, Martin Utley, Christos Paschalides, John Pilling, John Daniel Robb, Karen Macmillan Harrison-Phipps. A prospective randomized controlled study to assess the effectiveness of CoSeal® to seal air leaks in lung surgery. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery. 2011; 40(2): 304-8.

Zhang K, Mo X, Huang C, He C, Wang H. Electrospun scaffolds from silk fibroin and their cellular compatibility. Journal of Biomedical Materials Research Part A. 2009: 976–983.

Vons B, Tryhubchak O, Grochovuy T, Chubka M, Bihunyak V. Research of powders of the cryolyophilized xenoderm of porcine skin. International. Journal of Green Pharmacy (IJGP). 2018;12(3)(Supp l): 657-64.

Tan Q, Li S, Ren J, Chen C. Fabrication of Porous Scaffolds with a Controllable Microstructure and Mechanical Properties by Porogen Fusion Technique. International Journal of Molecular Sciences. 2011;12(2): 890-904.

Chen G., Kawazoe N. Preparation of polymer-based porous scaffolds for tissue engineering. Characterisation and Design of Tissue Scaffolds. 2016:105-25.

Deng A, Chen A, Wang S, Li Y, Liu Y, Cheng X, Zhao Z, Lin D. Porous nanostructured poly-l-lactide scaffolds prepared by phase inversion using supercritical CO2 as a nonsolvent in the presence of ammonium bicarbonate particles. The Journal of Supercritical Fluids. 2013;77: 110-6.

Hsu BB, Conway W, Tschabrunn CM, Mehta M, Perez-Cuevas MB, Zhang S, Hammond PT. Clotting mimicry from robust hemostatic bandages based on self-assembling peptides. ACS Nano. 2015;9(9): 9394-406.

Hu Z, Ouyang QQ, Cheng Y, Hong PZ, Liao MN, Chen FJ, Li SD. Optimization of preparation process and characterization of carboxymethyl chitosan/sodium alginate hemostatic sponge. IOP Conference Series: Materials Science and Engineering. 2017;213:012045.

##submission.downloads##

Опубліковано

2022-12-02

Як цитувати

Pavliuk, B. V., Chubka, M. B., Hroshovyi, T. A., & Debrivskyj, V. V. (2022). ГУБКИ МЕДИЧНІ/ГЕМОСТАТИЧНІ ЯК СУЧАСНІ ПЕРСПЕКТИВНІ ЗАСОБИ ДЛЯ ЗУПИНКИ КРОВОТЕЧ ТА ЗАКРИТТЯ РАН. Фармацевтичний часопис, (2), 40–51. https://doi.org/10.11603/2312-0967.2022.2.13334

Номер

Розділ

ОГЛЯДИ