ІМУНОМОДУЛЮЮЧИЙ ВПЛИВ PRP-ТЕРАПІЇ НА РІВЕНЬ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕСУ ТА ФАГОЦИТАРНУ АКТИВНІСТЬ НЕЙТРОФІЛІВ ПРИ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМУ ГОСТРОМУ ПЕРИТОНІТІ

Автор(и)

  • Р. М. ЧЛЕК Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України, Тернопіль, Україна https://orcid.org/0009-0000-0599-6896
  • І. М. КЛІЩ Тернопільський національний медичний університет імені І. Я. Горбачевського МОЗ України, Тернопіль, Україна https://orcid.org/0000-0001-6226-4296

DOI:

https://doi.org/10.11603/2414-4533.2026.1.16099

Ключові слова:

перитоніт, плазма, збагачена тромбоцитами (PRP), PRP-терапія, імунна відповідь, оксидативний стрес

Анотація

Мета роботи: встановити вплив плазми, збагаченої тромбоцитами (platelet-rich plasma (PRP)), на рівень оксидативного стресу та фагоцитарну активність нейтрофілів при моделюванні експериментального перитоніту в щурів.

Матеріали і методи. Експериментальне дослідження проведено на статевозрілих білих щурах-самцях лінії Вістар масою 200–220 г, відібраних випадковим чином із віварію Тернопільського національного медичного університету імені І. Я. Горбачевського МОЗ України. Модель гострого перитоніту відтворювали шляхом внутрішньочеревного введення 10 % калової суспензії. Через 24 год після індукції патологічного процесу тваринам основної групи вводили PRP. Оцінювання біомаркерів проводили на 1, 4, 7 та 10 доби експерименту. Досліджували динаміку змін показників ендотоксикозу, імунної відповіді, оксидативного стресу та фагоцитарної активності нейтрофільних гранулоцитів. Усі експериментальні процедури виконано згідно з етичними принципами, затвердженими Першим національним конгресом з біоетики та відповідно до вимог Європейської конвенції з питань захисту хребетних тварин, що використовуються для дослідних та інших наукових цілей. Статистичну обробку отриманих даних здійснювали за допомогою програмного забезпечення Statistica 10.0 (StatSoft Inc., США).

Результати. Застосування плазми, збагаченої тромбоцитами, при експериментальному перитоніті сприяє зниженню рівня оксидативного стресу та відновленню фагоцитарної активності нейтрофілів. Динаміка CD8⁺ Т-лімфоцитів у процесі розвитку експериментального перитоніту характеризувалася початковим підвищенням їх кількості в гострий період захворювання. Подальше зниження рівня CD8⁺ клітин на пізніших етапах спостереження може свідчити про виснаження функціональних резервів Т-кілерів, пригнічення клітинної ланки імунітету та зниження здатності організму до ефективного контролю за інфекційним процесом. Стабільне збільшення кількості CD22⁺ В-лімфоцитів упродовж експерименту свідчить про тривалу активацію гуморальної ланки імунітету. Застосування PRP справляло виражений регуляторний вплив на перебіг імунної відповіді. Експериментальні результати підтверджують наявність вираженого багатокомпонентного терапевтичного ефекту PRP при моделюванні гострого перитоніту в щурів.

Висновки. Проведений аналіз засвідчив системний вплив PRP на ключові патогенетичні ланки перебігу захворювання – оксидативні, імунні та метаболічні порушення. Гострий перитоніт супроводжується суттєвим підвищенням рівнів активних форм кисню, молекул середньої маси та циркулюючих імунних комплексів, що вказує на надмірне оксидативне й ендотоксичне навантаження. Ці процеси сприяють ушкодженню клітинних структур, посиленню запальної реакції та прогресуванню ендогенної інтоксикації. PRP виявляє комплексну протизапальну, антиоксидантну та імуномодулюючу дії при експериментальному перитоніті. Результати дослідження вказують на доцільність використання PRP як перспективного терапевтичного агента у складі комплексного лікування перитоніту з метою зменшення проявів імунопатологічних реакцій, попередження ускладнень та покращення клінічного прогнозу.

Отримано: 05.01.2025 | Переглянуто: 26.01.2026 | Прийнято: 23.02.2026

Посилання

Pavlovic V, Ciric M, Jovanovic V, Stojanovic P. Platelet-rich plasma: a short overview of certain bioactive components. Open Med (Wars). 2016; 11(1):242-47. DOI: 10.1515/med-2016-0048.

Chicharro-Alcántara D, Rubio-Zaragoza M, Damiá-Giménez E, Carrillo-Poveda JM, Cuervo-Serrato B, Peláez-Gorrea P, et al. Platelet-rich plasma: new insights for cutaneous wound healing management. J Funct Biomater. 2018; 9(1):10. DOI: 10.3390/jfb9010010.

Everts PA, Onishi K, Jayaram P, Lana JF, Mautner K. Platelet-rich plasma: new performance understandings and therapeutic considerations in 2020. Int J Mol Sci. 2020; 21(20):7794. DOI: 10.3390/ijms21207794.

Sundman EA, Cole BJ, Fortier LA. Growth factor and catabolic cytokine concentrations are influenced by the cellular composition of platelet-rich plasma. Am J Sports Med. 2011; 39(10):2135-140. DOI: 10.1177/0363546511417792.

Magalon J, Chateau AL, Bertrand B, Louis ML, Silvestre A, Giraudo L, et al. DEPA classification: a proposal for standardising PRP use. BMJ Open Sport Exerc Med. 2016; 2(1):e000060. DOI: 10.1136/bmjsem-2015-000060.

Sartelli M, Kluger Y, Ansaloni L, Hardcastle TC, Rasa K, Rello J, et al. 2020 update of the WSES guidelines for the management of intra-abdominal infections. World J Emerg Surg. 2020; 15:38. DOI: 10.1186/s13017-020-00316-3.

Coccolini F, Catena F, Sartelli M; WSES Expert Panel. Peritonitis: pathophysiology and clinical management. Int J Surg. 2015; 13:31-7. DOI: 10.1016/j.ijsu.2014.11.035.

Segal AW. How neutrophils kill microbes. Annu Rev Immunol. 2016; 34:197-23. DOI: 10.1146/annurev-immunol-041015-055358.

Dahlgren C, Karlsson A. Respiratory burst in human neutrophils. J Immunol Methods. 2019; 467:24-38. DOI: 10.1016/j.jim.2019.112613.

Mittal M, Siddiqui MR, Tran K, Reddy SP, Malik AB. Reactive oxygen species in inflammation and tissue injury. Antioxid Redox Signal. 2014; 20(7):1126-167. DOI: 10.1089/ars.2012.5149.

Boswell SG, Cole BJ, Sundman EA, Karas V, Fortier LA. Platelet-rich plasma: a milieu of bioactive factors. Arthroscopy. 2012; 28(3):429-39. DOI: 10.1016/j.arthro.2011.10.018.

Marx RE. Platelet-rich plasma (PRP): what is PRP and what is not PRP? Implant Dent. 2001; 10(4):225-28. DOI: 10.1097/00008505-200110000-00002.

Chen L, Deng H, Cui H, Fang J, Zuo Z, Deng J, et al. Inflammatory responses and inflammation-associated diseases in organs. Oncotarget. 2018; 9(6):7204-18. DOI: 10.18632/oncotarget.23208.

Rosales C. Neutrophils at the crossroads of innate and adaptive immunity. J Leukoc Biol. 2020; 108(1):377-96. DOI: 10.1002/JLB.4MIR0220-574RR.

Andia I, Maffulli N. Platelet-rich plasma: therapeutic biology. Nat Rev Rheumatol. 2013; 9(12):721-30. DOI: 10.1038/nrrheum.2013.141.

Wu D, Yang X, Han W, Liu Q. The role of adaptive immunity in sepsis: recent advances and future perspectives. Signal Transduct Target Ther. 2024; 9(1):25. DOI: 10.1038/s41392-024-01740-1.

Delano MJ, Ward PA. Sepsis-induced immune dysfunction: can immune therapies reduce mortality? J Clin Invest. 2016; 126(1):23-31. DOI: 10.1172/JCI82221.

Cavaillon JM. Sepsis and the “cytokine storm”. Med sci (paris). 2018; 34(1):37-44. DOI: 10.1051/medsci/20183401011.

Bezzerri V, Cipolli M, Caverzasi E, Vella A, Stigliani A, Sorio C, et al. A focus on inflammatory and bacterial biomarkers in peritonitis: neutrophil recruitment, cytokine gradients, and immune pathogenesis. Cells. 2025; 14(21):1653. DOI: 10.3390/cells14211653.

##submission.downloads##

Опубліковано

2026-03-16

Як цитувати

ЧЛЕК, Р. М., & КЛІЩ, І. М. (2026). ІМУНОМОДУЛЮЮЧИЙ ВПЛИВ PRP-ТЕРАПІЇ НА РІВЕНЬ ОКСИДАТИВНОГО СТРЕСУ ТА ФАГОЦИТАРНУ АКТИВНІСТЬ НЕЙТРОФІЛІВ ПРИ ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНОМУ ГОСТРОМУ ПЕРИТОНІТІ. Шпитальна хірургія. Журнал імені Л. Я. Ковальчука, (1), 139–147. https://doi.org/10.11603/2414-4533.2026.1.16099

Номер

Розділ

ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ