ДОСЛІДЖЕННЯ ФАРМАКОЛОГІЧНОЇ ДІЇ ЕКСТРАКТУ ТРАВИ TAGETES PATULA L ЗА УМОВ СТРЕПТОЗОТОЦИНОВОГО ДІАБЕТУ У ЩУРІВ
DOI:
https://doi.org/10.11603/1811-2471.2024.v.i4.14971Ключові слова:
екстракт трави Tagetes Patula L, стрептозотоциновий діабет, Силімарин, Глібенкламід, антидіабетична дія, антиоксидантна активність, метаболічні розлади, лікарські рослиниАнотація
РЕЗЮМЕ. Цукровий діабет 2-го типу (ЦД 2) є однією з найважливіших медико-соціальних проблем в усьому світі через щорічне збільшення кількості хворих на ЦД 2, прогредієнтний перебіг захворювання, тяжкість ускладнень, обмежений асортимент лікарських препаратів. За даними міжнародних досліджень, значну частку клінічних випадків пов’язують із попереднім ураженням підшлункової залози лікарськими засобами. Перспективним об’єктом для зниження токсичної дії деяких лікарських засобів на підшлункову залозу можна вважати лікарську рослинну сировину із антиоксидантною та цитопротекторною дією.
Метою нашої роботи було оцінити вплив екстракту трави Tagetes Patula L на зміну клінічних та біохімічних показників за умов стрептозотоцинового діабету.
Матеріал і методи. Експериментальний цукровий діабет у щурів моделювали однократним внутрішньочеревним введенням стрептозотоцину (55 мг/кг) на тлі гіперкалорійної дієти. Досліджуваний cухий екстракт трави чорнобривців розлогих (ЕТЧР) та референс-препарати вводили у дозах 25, 25 та 0,6 мг/кг відповідно. Визначали динаміку маси тіла тварин, вміст глюкози, інсуліну, глікозильованого гемоглобіну (HbА1с), ТБК-реактантів, відновленого глутатіону, каталази, маркери ліпідного обміну (холестерол, тригліцериди). Отримані результати обраховували методами дескрипційної статистики, вірогідними вважали відмінності при p<0,05.
Результати. За умов експериментального стрептозотоцинового діабету ЕТЧР нормалізує масу тіла тварин, вірогідно зменшує гіперглікемію (в 1,2 раза, HbА1с у 1,1 раза, інсуліну в 1,4 раза), нормалізує показники ліпідного обміну (знижує рівні тригліцеридів у 1,2 раза, холестеролу в 2,1 раза, зменшує прояви оксидативного стресу (знижує вміст ТБК-реактантів на 61 %) та нормалізує ендогенний антиоксидантний захист (підвищує активність каталази на 48,1 %, вміст вільного глутатіону на 73,2 %) відносно показників нелікованих тварин.
Висновки. ЕТЧР чинить значну антидіабетичну дію за умов стрептозотоцинового діабету. За досліджуваною фармакологічною активністю ЕТЧР перевищує дію препарату порівняння Силімарину, за здатністю нормалізувати показники ліпідного обміну та антиоксидантною дією перевищує ефективність глібенкламіду.
Посилання
World Health Organization (n.d.). Noncommunicable diseases: Mortality.. Retrieved from https://www.who.int/data/gho/data/themes/topics/topic-details/GHO/ncd-mortality.
Pervynna medychna dopomoha v Ukrayini: dosyahnutyy prohres i nastupni kroky: analiz danykh za 2020–2021 r.: seriya analitychnykh zapysok [Primary health care in Ukraine: progress achieved and next steps: 2020–2021 data analysis: analytical notes series] (2023). Copenhagen: WHO Regional Office for Europe. World Health Organization. Licension: CC BY-NC-SA 3.0 IGO. Doc.number: WHO/EURO:2023-7087-46853-69102 [in Ukrainian] Retrieved from https://iris.who.int/bitstream/handle/10665/367317/WHO-EURO-2023-7087-46853-69102-ukr.pdf?sequence=1.
Manchuri, K.M., Shaik, M.A. & Gopireddy, V.S. (2024). Analytical Methodologies to Detect N-Nitrosamine Impurities in Active Pharmaceutical Ingredients, Drug Products and Other Matrices. Chem Res Toxicol., 37(9), 1456-1483. DOI: 10.1021/acs.chemrestox.4c00234. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.chemrestox.4c00234
Sosnowski, K., Nehring, P. & Przybyłkowski, A. (2022). Pancreas and Adverse Drug Reactions: A Literature Review. Drug Saf., 45(9), 929-939. DOI: 10.1007/s40264-022-01204-0. DOI: https://doi.org/10.1007/s40264-022-01204-0
Jones, M.R., Hall, O.M. & Kaye, A.M. (2015). Drug-induced acute pancreatitis: a review. Ochsner J., 15(1), 45-51.
Akshintala, V.S., Kamal, A. & Singh, V.K. (2018). Uncomplicated Acute Pancreatitis: Evidenced-Based Management Decisions. Gastrointest Endosc Clin N Am., 28(4), 425-438. DOI: 10.1016/j.giec.2018.05.008 DOI: https://doi.org/10.1016/j.giec.2018.05.008
Stefanov, O.V. (2001). Doklinichni doslidzhennia likarskykh zasobiv: metod. rek. [Preclinical research of medicines: methodical recommendations]. Kyiv: Avitsena [in Ukrainian].
Zhu, Y., Wang, D., Zhou, S., Zhou, T. (2024). Hypoglycemic Effects of Gynura divaricata (L.) DC Polysaccharide and Action Mechanisms via Modulation of Gut Microbiota in Diabetic Mice. J Agric Food Chem., 72(17), 9893-9905. DOI: 10.1021/acs.jafc.4c00626. DOI: https://doi.org/10.1021/acs.jafc.4c00626
Tsubanova, N.A., Voloshchuk, N.I., Galevych, G.B. (2023). Vplyv ekstraktu travy Tagetes Patula L. na morfostrukturni zminy pidshlunkovoyi zalozy za umov eksperymental'noho streptozotsyn-indukovanoho utvorennya [The influence of Tagetes Patula L. herb extract on the morphostructural changes of the pancreas under experimental streptozotocin-induced injury]. Farmakolohiya ta likars'ka toksykolohiya - Pharmacology and Drug Toxicology, 17 (5), 338–347 [in Ukrainian]. DOI: 10.33250/17.04.338. DOI: https://doi.org/10.33250/17.04.338
Tsubanova, N. & Trutaieva, L. (2021). Antioxidant and anticytolytic action as the basis of the Pancreo-Plant® hepatoprotective effect in acute liver ischemia. Ceska Slov Farm., 70(3), 102-108. DOI: https://doi.org/10.5817/CSF2021-3-100
Mihara, M. & Uchiyama, M. (1978). Determination of malonaldehyde precursor in tissues by thiobarbituric acid test. Anal Biochem., 86(1), 271–278. DOI: 10.1016/0003-2697(78)90342-1. DOI: https://doi.org/10.1016/0003-2697(78)90342-1
Verbunt, R.J., van Dockum, W.G., Bastiaanse, E.M., Egas, J.M., & van der Laarse, A. (1995). Glutathione disulfide as an index of oxidative stress during postischemic reperfusion in isolated rat hearts. Mol Cell Biochem., (1), 85-93. DOI: 10.1007/BF00926745. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00926745
Undyala, V., Terlecky, S.R., & Vander Heide, R.S. (2011). Targeted intracellular catalase delivery protects neonatal rat myocytes from hypoxia-reoxygenation and ischemia-reperfusion injury. Cardiovasc Pathol., 20(5), 272-280. DOI: 10.1016/j.carpath.2010.06.011. DOI: https://doi.org/10.1016/j.carpath.2010.06.011
Zhu, Y., Devi, S., Kumar, M. & Dahiya, R. S. (2021). Evaluation of Gamma Amino Butyric Acid (GABA) and Glibenclamide Combination Therapy in Streptozotocin Induced Diabetes. Endocr Metab Immune Disord Drug Targets., 21(11), 2005-2016. DOI: 10.2174/1871530320666201208110945. DOI: https://doi.org/10.2174/1871530320666201208110945
Zygula, A., Kosinski, P. & Zwierzchowska, A. (2019). Oxidative stress markers in saliva and plasma differ between diet-controlled and insulin-controlled gestational diabetes mellitus. Diabetes Res Clin Pract., 148, 72-80. DOI: 10.1016/j.diabres.2018.11.021. DOI: https://doi.org/10.1016/j.diabres.2018.11.021
Zu, Y., Wan, L.J., Cui, S.Y., Gong, Y.P. & Li, C.L. (2015). The mitochondrial Na(+)/Ca(2+) exchanger may reduce high glucose-induced oxidative stress and nucleotide-binding oligomerization domain receptor 3 inflammasome activation in endothelial cells. J Geriatr Cardiol., 12(3), 270-278. DOI: 10.11909/j.issn.1671-5411.2015.03.003.
Zorena, K., Jaskulak, M. & Michalska, M. (2022). Air Pollution, Oxidative Stress, and the Risk of Development of Type 1 Diabetes. Antioxidants (Basel), 11(10), 1908. DOI: 10.3390/antiox11101908. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox11101908
Zhang, Z.C., Hu, S.H., Peng, Y.Q. & Yan, H.S. (2019). The complete chloroplast genome of Mexican marigold (Tagetes erecta L., Asteraceae). Mitochondrial DNA B Resour., 4(2), 3587-3588. DOI: 10.1080/23802359.2019. 1677191. DOI: https://doi.org/10.1080/23802359.2019.1677191
Di Lorenzo, C., Colombo, F. & Biella, S. (2021). Polyphenols and Human Health: The Role of Bioavailability. Nutrients, 13(1), 273-278. DOI: 10.3390/nu13010273. DOI: https://doi.org/10.3390/nu13010273
Taofiq, O., González-Paramás, A.M. & Barreiro, M.F. (2017). Hydroxycinnamic Acids and Their Derivatives: Cosmeceutical Significance, Challenges and Future Perspectives, a Review. Molecules, 22(2), 281-288. DOI: 10.3390/molecules22020281. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules22020281
Zduńska, K., Dana, A. & Kolodziejczak, A. (2018). Antioxidant Properties of Ferulic Acid and Its Possible Application. Skin Pharmacol Physiol., 31(6), 332-336. DOI: 10. 1159/000491755. DOI: https://doi.org/10.1159/000491755
Sneddon, L.U., Halsey, L.G., & Bury, N.R. (2017). Considering aspects of the 3Rs principles within experimental animal biology. J Exp Biol., 1(220), 3007-3016. DOI: 10.1242/jeb.147058. DOI: https://doi.org/10.1242/jeb.147058
Marchyshyn, S.М., Berdey, Т.S. & Demydyak, О.L. (2014). Mikroskopichnyy analiz travy chornobryvtsiv rozlohykh [Microscopic analysis of annual Marigold herb (Tagetes Patula L)]. Farmatsevtychnyy chasopys - Pharmaceutical journal, (3), 12-18 [in Ukrainian]. DOI: 10.11603/2312-0967.2011.3.2713.
Yoon, D.S., Cho, S.Y., Yoon, H.J., & Kim, S.R. (2021). Protective effects of p-coumaric acid against high-fat diet-induced metabolic dysregulation in mice. Biomed Pharmacother., 142, 111969. DOI: 10.1016/j.biopha.2021.111969 DOI: https://doi.org/10.1016/j.biopha.2021.111969
Nguyen, L.V., Nguyen, K.D.A. & Ma, C.T. (2021). p-Coumaric Acid Enhances Hypothalamic Leptin Signaling and Glucose Homeostasis in Mice via Differential Effects on AMPK Activation. Int J Mol Sci., 22(3), 1431. DOI: 10.3390/ijms22031431. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms22031431
Yamada, S., Warashina T., Shirota, O., Kato, Y. & Fukuda, T. (2024). Identification of Sinapic Acid Derivatives from Petit Vert Leaves and Their Effects on Glucose Uptake in C2C12 Murine Myoblasts. Biomolecules., 14(10), 1246. DOI: 10.3390/biom14101246. DOI: https://doi.org/10.3390/biom14101246
Naz, R., Saqib, F., Awadallah, S., Wahid, M., Latif, M.F., Iqbal, I. & Mubarak, M.S. (2023). Food Polyphenols and Type II Diabetes Mellitus: Pharmacology and Mechanisms. Molecules, 28(10), 3996 DOI: 10.3390/molecules28103996. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules28103996
