ОЦІНКА БЕЗПЕЧНОСТІ ВНУТРІШНЬОПЕЧІНКОВОГО ВВЕДЕННЯ 10 % РОЗЧИНУ КАЛЬЦІЮ ХЛОРИДУ У ЩУРІВ ЛІНІЇ WISTAR: ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНЕ ДОСЛІДЖЕННЯ
DOI:
https://doi.org/10.11603/1811-2471.2019.v0.i2.10169Ключові слова:
10 % розчин кальцію хлориду, внутрішньопечінкове введення, безпечність, ускладнення, летальністьАнотація
Мета дослідження – оцінити безпечність внутрішньопечінкового введення 10 % розчину кальцію хлориду в експерименті in vivo.
Матеріал і методи. Експеримент виконано на 26 дорослих щурах-самицях лінії Wistar. Інтрапечінкове введення 10 % кальцію хлориду здійснювали одноразово. Доза становила 5,0 мг/100,0 г ваги тіла тварини, у середньому (0,16±0,03) мл. Оцінювали показники гемограми, печінкових проб, концентрацію іонів кальцію, специфічні ускладнення, летальність. Терміни контролю – 1, 3 5, доби для гемограми та печінкових проб і 1, 5, 10 хвилини для іонізованого кальцію. Ускладнення та летальність оцінювали до 21 доби.
Результати. На 1 та 3 доби зміни параметрів гемограми та печінкових проб характеризувались зниженням рівня гемоглобіну (р=0,004) та збільшенням кількості лейкоцитів (р=0,005), рівнів загального білірубіну (р=0,005), АлАт (р=0,005), АсАт (р=0,005), ЛФ (р=0,005), порівняно з початковими. На 5 добу відмічалась нормалізація цих параметрів до вихідних: гемоглобін (р=0,366), лейкоцити (р=0,051), загальний білірубін (р=0,469), АлАт (р=0,575), АсАт (р=0,959), ЛФ (р=0,169) відповідно. Підвищення концентрації іонізованого кальцію сироватки крові щурів на 1 хвилині, порівняно з вихідними (р=0,005), не супроводжувалось фатальними наслідками. Зміни всіх гематологічних параметрів відбувалися в межах референтих норм і не супроводжувались клінічними проявами. Післяопераційні ускладнення та летальність не були пов’язані з внутріньопечінковим введенням препарату.
Висновок. Внутрішньопечінкове введення 10 % розчину кальцію хлориду в дозі 5,0 мг /100,0 мг ваги тіла тварини не супроводжується порушенням функціонального стану печінки, гомеостазу іонів кальцію крові, розвитком локальних ускладнень та летальністю.
Посилання
Forner, A., Reig, M., & Bruix, J. (2018). Hepatocellular carcinoma. Lancet, 391, 1301-1314. Retrieved from: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)30010-2. DOI: https://doi.org/10.1016/S0140-6736(18)30010-2
Balogh, J., Victor 3rd, D., Asham, E.H., Burroughs, S.G., Boktour, M., Saharia, A., ... & Monsour Jr., H.P. (2016). Hepatocellular carcinoma: a review. J. Hepatocell Carcinoma, 3, 41-53. Retrieved from: doi:10.2147/JHC.S61146. DOI: https://doi.org/10.2147/JHC.S61146
Van Cutsem, E., Cervantes, A., Nordlinger, B., & Arnold, D. (2014). Metastatic colorectal cancer: ESMO Clinical Practice Guidelines for diagnosis, treatment and follow-up. Ann. Oncol., 3, 1-9. Retrieved from: doi: 10.1093/annonc/mdu260. DOI: https://doi.org/10.1093/annonc/mdu260
Fitzgerald, T.L., Brinkley, J., Banks, S., Vohra, N., Englert, Z.P., & Zervos, E.E. (2014). The benefits of liver resection for non-colorectal, non-neuroendocrine liver metastases: a systematic review. Langenbecks Arch. Surg., 399, 989-1000. DOI: https://doi.org/10.1007/s00423-014-1241-3
Ryan, M.J., Willatt, J., Majdalany, B.S., Kielar, A.Z., Chong, S., Ruma, J.A., & Pandya, A. (2016) Ablation techniques for primary and metastatic liver tumors. World J. Hepatol., 8 (3), 191-199. Retrieved from: http://dx.doi.org/10.4254/wjh.v8.i3.191. DOI: https://doi.org/10.4254/wjh.v8.i3.191
Dronov, A.I., Kovalskaya, I.A., Homenko, D.I., Zharkov, A.Ya., Leshchenko, V.M., Krutko, O.A., & Kozachuk, Ye.S. (2018). Termometriia protsessa lokalnogo kriovozdeystviya v biologicheskoy tkani na diskretnykh glubinakh: razrabotka kompleksa izmeritelnogo intraoperatsionnogo termoparnogo chetyrehkanalnogo (KIIT-4) [Thermometry of the process of local cryoinfluence in biological tissue at discrete depths: development of a complex of measuring intraoperative four-channel thermocouple (KIIT-4)]. Khirurgiya. Vostochnaya Yevropa – Surgery. Eastern Europe, 7 (1), 21-27 [in Russian].
Baust, J.G., Gage, A.A., Johansen, T.E. B., & Baust, J.M. (2014). Mechanisms of cryoablation: Clinical consequences on malignant tumors. Cryobiology, 68 (1), 1-11. doi:10.1016/j.cryobiol.2013.11.001. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cryobiol.2013.11.001
Diachenko, M.I., Klymenko, M.M., Domanskyi, S.V., Sankin, Yu.Yu., & Nechaiev, I.H. (2016). Problemy ta perspektyvy vykorystannia kriotekhnolohii v neiroonkolohii [Problems and prospects of using cryotechnologies in neuroconclusion]. Molodyi vchenyi – Young Scientist, 12 (39), 303-306 [in Ukrainian].
Dronov, O.I., Khomenko, D.I., Bakunets, P.P., & Teterina, V.V. (2017). Temperaturni pokaznyky pislia kriovplyvu, potentsiiovanoho dystyliovanoiu vodoiu, na eksperymentalnii modeli pechinky svyni za umov vidsutnosti splankhnichnoho krovotoku [Temperature changes during cryoeffect potentiated with distilled water assessed in porcine liver model without splanchnic blood flow]. Probl. Cryobiol Cryomed., 27 (4), 348-355 [in Ukrainian]. doi: 10.15407/cryo27.04.348. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo27.04.348
Aydınцz, S., Sleymanoğlu, S., Haholu, A., Uzun, G., Karademir, F., Yıldız, Ş., & İsmail, S. (2007). Hyperbaric oxygen therapy in calcium chloride extravasation injuries: An experimental animal studyeur. J. Gen. Med., 4 (4), 186-189. DOI: https://doi.org/10.29333/ejgm/82527
Normatyvno-dyrektyvni dokumenty MOZ Ukrainy. Instruktsiia dlia medychnoho zastosuvannia preparatu kaltsiiu khloryd [Regulatory documents of the Ministry of Health of Ukraine. Instructions for medical use of calcium chloride]. Retrieved from: http://mozdocs.kiev.ua/likiview.php?id=19297 [in Ukrainian].
