ПОКАЗНИКИ КЛІТИННОГО ЦИКЛУ І ФРАГМЕНТАЦІЇ ДНК-КЛІТИН СЕЛЕЗІНКИ В РАННІ ТЕРМІНИ ПІСЛЯ ТЕРМІЧНОГО ОПІКУ ШКІРИ НА ФОНІ ВВЕДЕННЯ ЛАКТОПРОТЕЇНУ З СОРБІТОЛОМ АБО HAES-LX-5 %

Автор(и)

  • N. P. Ocheretna Вінницький національний медичний університет ім. М. І. Пирогова;
  • Yu. I. Guminskiy Вінницький національний медичний університет ім. М. І. Пирогова;
  • I. V. Gunas Міжнародна академія інтегративної антропології, м. Вінниця

DOI:

https://doi.org/10.11603/2415-8798.2018.1.8627

Ключові слова:

показники клітинного циклу, фрагментація ДНК, селезінка, щури, опік шкіри, розчин лактопротеїну з сорбітолом, розчин HAES-LX-5 %.

Анотація

В науковій літературі відсутні дані відносно досліджень особливостей показників клітинного циклу і фрагментації ДНК-клітин селезінки після термічного опіку шкіри на тлі введення інфузійних гіперосмолярних розчинів.

Мета дослідження – встановити особливості показників клітинного циклу і фрагментації ДНК-клітин селезінки через 1; 3 і 7 діб після опікового ушкодження шкіри на тлі введення розчинів лактопротеїну з сорбітолом або HAES -LX -5 %.

Матеріали і методи. Дослідження виконано на лабораторних білих щурах-самцях масою 155–160 г, отриманих з віварію ДУ “Інститут фармакології та токсикології АМН України”. Щурів поділили в експерименті на 6 груп: перша, друга і третя групи – щури без термічної травми, яким проводили інфузію 0,9 % розчину NaCl, лактопротеїну з сорбітолом та HAES -LX -5 % у дозі 10 мл на кг. У четвертій, п’ятій і шостій групах щурам проводили інфузію 0,9 % розчину NaCl, лактопротеїну з сорбітолом та HAES -LX -5 % у дозі 10 мл на кг після опіку шкіри. Опікове ушкодження шкіри викликали шляхом прикладання до попередньо депільованих бічних поверхонь тулуба щурів на 10 с чотирьох мідних пластинок (по дві пластини з кожного боку, кожна з площею поверхні по 13,86 см2), які попередньо упродовж 6 хв нагрівали у воді з постійною температурою 100 ºС. Гоління бокових поверхонь тулуба щурів, катетеризацію вен, постановку опіків шкіри та декапітацію тварин проводили в умовах внутрішньовенного пропофолового наркозу (із розрахунку 60 мг/кг маси тварини). Вміст ДНК в ядрах клітин селезінки щурів визначали методом проточної цитометрії на багатофункціональному науково-дослідному проточному цитометрі “Partec PAS ” фірми Partec. Для збудження флуоресценції DAP I застосовувалb УФ-випромінювання. З кожного зразка аналізу нуклеарної суспензії підлягало 20 тис. подій. Циклічний аналіз клітин виконували засобами програмного забезпечення FloMax (Partec, Німеччина) у повній цифровій відповідності згідно з математичною моделлю, де визначали: G0G1 – відсоткове співвідношення клітин фази G0G1 до всіх клітин клітинного циклу (вміст ДНК = 2c); S – відсоткове співвідношення фази синтезу ДНК до всіх клітин клітинного циклу (вміст ДНК > 2c та < 4c); G2+M – відсоткове співвідношення фази G2+M до всіх клітин клітинного циклу (ДНК=4c); IP – індекс проліферації, що визначається за сумою показників S+G2+M; ВР – блок проліферації, який оцінюють за співвідношенням S/(G2+M); SUB -G0G1 – інтервал на ДНК-гістограмах RN 1 перед піком G0G1, який вказує на ядра клітин із вмістом ДНК<2с (визначення фрагментації ДНК). Cтатистичну обробку отриманих результатів проводили у ліцензійному пакеті Statistica 6.1 із застосуванням непараметричних методів оцінки отриманих результатів.

Результати досліджень та їх обговорення. При застосуванні розчину лактопротеїну з сорбітолом через 1 добу після опікового ураження шкіри спостерігаються більші середні значення показника S-фази (на 39,4 %, р<0,05), порівняно з групою після опіку з корекцією 0,9 % розчину NaCl, однак вони залишаються значно меншими (на 35,4 %, р<0,05) відносно середніх значень даного показника в групі без опікового ушкодження. Також спостерігаються більші значення індексу проліферації (на 38,6 %, р=0,076) в групі “опік + лактопротеїн з сорбітолом” порівняно з групою “опік + 0,9 % розчин NaCl”. В цей же термін спостереження при астосуванні HAES -LX -5 % на тлі опіку шкіри, порівняно з аналогічними показниками групи “опік + 0,9 % розчин NaCl”, суттєво меншими виявились показники фаз G0G1 (на 4,8 %, р<0,05) та інтервалу SUB -G0G1 (на 34,9 %, р<0,01) і більшими показники S-фази (на 41,1 %, р<0,05) та індекс проліферації (на 32,7 %, р<0,05). При порівнянні показників клітинного циклу клітин селезінки між групами “опік + лактопротеїн з сорбітолом” та “опік + HAES -LX -5 %” через 1 добу експерименту встановлено лише достовірно (р<0,05) на 30,3 % менші значення інтервалу SUB -G0G1 при застосуванні HAES -LX -5 %. Таким чином, вже через 1 добу після опіку шкіри розчином лактопротеїну з сорбітолом більш суттєво впливав на синтетичні процеси, а HAES -LX -5 % – на процеси як снтезу ДНК, так і апоптозу порівняно із застосуванням 0,9 % розчину NaCl. Подібна картина за характером впливу даних препаратів на показники клітинного циклу клітин селезінки була і через 3 та 7 діб після опікового ураження шкіри. Зокрема, порівняно з показниками групи “0,9 % розчину NaCl без опіку” через 3 доби, на фоні опіку та корекції розчином лактопротеїну з сорбітолом більшими виявились середні значення блока проліферації, а на тлі корекції розчином HAES -LX -5 % вищими були середні значення показників фази S і блока проліферації та меншими – інтервалу SUB -G0G1. Через 7 діб після опіку шкіри відмінностей при впливі на показники клітинного циклу клітин селезінки між розчинами лактопротеїну з сорбітолом та HAES -LX -5 % ми не виявили. Однак в обох цих групах були встановлені більші середні значення показників S-фази, блока проліферації та інтервалу SUB -G0G1 порівняно з середніми значеннями аналогічних показників групи “опік + 0,9 % розчину NaCl”.

Висновки. Застосування розчинів лактопротеїну з сорбітолом або HAES -LX -5 % на тлі опікового ушкодження шкіри сприяють більш ефективному процесу оновлення клітин селезінки шляхом стимуляції синтезу ДНК та меншого рівня апоптозу, особливо при застосуванні HAES -LX -5 %.

Біографії авторів

N. P. Ocheretna, Вінницький національний медичний університет ім. М. І. Пирогова;

асистент кафедри анатомії людини Вінницького національного медичного університету імені М. І. Пирогова, тел.: 068-6762451, e-mail:

 

Yu. I. Guminskiy, Вінницький національний медичний університет ім. М. І. Пирогова;

д.мед.н., проф., проректор з науково-педагогічної (навчальної) роботи Вінницького національного медичного університету імені М. І. Пирогова, тел.: 096-6492450

I. V. Gunas, Міжнародна академія інтегративної антропології, м. Вінниця

д.мед.н., проф., виконавчий директор Міжнародної академії інтегративної антропології, тел.: 067-1210005

Посилання

Kozhemyakin, Yu.М., Khromov, О.S., Boldyreva, N.U., Dobrelya, N.V, & Sayfetdinova, G.А. (2017). Naukovo-praktychni rekomendatsiyi z utrymannia laboratornykh tvaryn ta roboty z nymy [Scientific and practical recommendations for the maintenance of laboratory animals and work with them]. K. : Interservis [in Ukraine].

Gusak, V.К., Shano, V.P., Zayats, Yu.V., Syrovatka, G.А., & Tarasenko, S.О. (2002). Ozhogovyiy shok : optimizatsiya intensivnoy terapii [Burn shock : optimizing intensive care]. Ukrayinskyi medychnyi chasopys – Ukrainian medical journal, 5 (31), 84-88 [in Ukrainian].

Stefanov, О.V. (2001). Doklinichni doslidzhennia likarskykh zasobiv. Metodychni rekomendatsii [Preclinical studies of drugs. Methodical recommendations]. Kyiv : Avicena [in Ukraine].

Dong, Y.Q., Yao, Y.M., Wei, P., Liu, H., Dong, N., Yu, Y., & Sheng, Z.Y. (2005). Effects of ethyl pyruvate on cell-mediated immune function in rats with delayed resuscitation after burn injury. Zhongguo Wei Zhong Bing Ji Jiu Yi Xue, 17 (1), 12-15.

Fazal, N., Shelip, A. & Alzahrani, A.J. (2013). Burn-injury affects gut-associated lymphoid tissues derived CD4+ T cells. Results in Immunology, 3, 85-94.

Gunas, I., Dovgan, I., & Masur, O. (1997). Method of thermal burn trauma correction by means of cryoinfluence. Abstracts are presented in zusammen mit der Polish Anatomical Society with the participation of the Association des Anatomistes Verhandlungen der Anatomischen Gesellschaft, Olsztyn, р. 105. Jena, München : Der Urban & Fischer Verlag.

Maekawa, T., Kajihara, H., Okabayashi, K., Otani, M., & Yuge, O. (2002). Impairment of splenic B and T lymphocytes in the early period after severe thermal injury: immunohistochemical and electron microscopic analysis. Burns, 28, 329-339.

Lee, M.O. (1989). Determination of the surface area of the white rat with its application to the expression of metabolic results. Am. J. Physiol., 24, 1223.

Regas, F.C., & Ehrlich, H.P. (1992). Elucidating the vascular response to burns with a new rat model. J. Trauma, 32 (5), 557-563.

Schwacha, M.G. & Chaudry, I.H. (2002). The cellular basis of post-burn immunosuppression: macrophages and mediators. Int. J. Mol. Med., 10 (3), 239-243.

Zhao, G., Yu, Y.M., Kaneki, M., Bonab, A.A., Tompkins, R.G., & Fischman, A.J. (2015). Simvastatin reduces burn injury-induced splenic apoptosis via downregulation of the TNF-α/NF-κB pathway. Ann. Surg., 261 (5), 1006-1012.

##submission.downloads##

Опубліковано

2018-04-28

Як цитувати

Ocheretna, N. P., Guminskiy, Y. I., & Gunas, I. V. (2018). ПОКАЗНИКИ КЛІТИННОГО ЦИКЛУ І ФРАГМЕНТАЦІЇ ДНК-КЛІТИН СЕЛЕЗІНКИ В РАННІ ТЕРМІНИ ПІСЛЯ ТЕРМІЧНОГО ОПІКУ ШКІРИ НА ФОНІ ВВЕДЕННЯ ЛАКТОПРОТЕЇНУ З СОРБІТОЛОМ АБО HAES-LX-5 %. Вісник наукових досліджень, (1). https://doi.org/10.11603/2415-8798.2018.1.8627

Номер

Розділ

ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ