ОСОБЛИВОСТІ МОРФОЛОГІЧНИХ ОЗНАК МОЛОДИХ ПАГОНІВ ХОЛОДКУ ЛІКАРСЬКОГО ТА ВИЗНАЧЕННЯ ЇХ АМІНОКИСЛОТНОГО СКЛАДУ
DOI:
https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2025.i4.15924Ключові слова:
Asparagus officinalis; фітоценози; пагони; амінокислоти; газова хромато-мас-спектрометрія; морфологічні особливості.Анотація
Вступ. Холодок лікарський (Asparagus officinalis L.) є харчовою, декоративною та лікарською рослиною з антиоксидантною, сечогінною та гіпотензивною активністю. Мета дослідження. Визначення морфологічних особливостей і аналіз якісного складу і кількісного вмісту амінокислот у молодих пагонах холодку лікарського, вирощених та зібраних в умовах Тернопільської області. Методи дослідження. Об’єктом досліджень були молоді пагони, які заготовляли на початку вегетації та висушували за температури 25–35 °C. Компонентний склад і кількісний вміст амінокислот визначали газовим хромато-мас-спектрометричним методом. Результати й обговорення. Проаналізовано морфологічні особливості молодих пагонів холодку лікарського. У досліджуваній сировині Asparagus officinalis було ідентифіковано 11 вільних і 13 зв’язаних амінокислот. Відмічено відсутність L-гліматіну та L-тирозину у вільному стані. Сумарний вміст вільних амінокислот становив 1,22 мг/г, тоді як зв’язаних – 78,85 мг/г. Висновки. Установлено якісний склад і кількісний вміст амінокислотного складу в молодих пагонах холодку лікарського. Серед зв’язаних виявлених сполук найбільша частка припадає на L-лейцин (12,45 мг/г), L-пролін (11,36 мг/г) і L-фенілаланін (9,7 мг/г). У вільному стані переважають L-валін, L-лі- зин, L-пролін та L-аспарагінова кислота.
Посилання
Begum A., Sindhu K., Giri K. [at al.]. Pharmacognostical and physio-chemical evaluation of Indian Asparagus officinalis Linn family Lamiaceae. Int. J. Pharmacogn. Phytochem. Res. 2017. № 9. P. 327–336.
Pegiou E, Mumm R, Acharya P. et al. Green and White Asparagus (Asparagus officinalis): A Source of Developmental, Chemical and Urinary Intrigue. Metabolites. 2019. Dec 25. 10 (1). P. 17. DOI: 10.3390/ metabo10010017
Булгаков П. О., Прісс О. П. Зберігання спаржі з використанням захисних покриттів і пакування. Information activity as a component of science development: The 13th International scientific and practical conference, April 4–7, 2023. Едмонтон, Канада : International Science Grou,. 2023. P. 21.
Altunel Tayyibe Açikgöz. Morphological and habitat characteristics of Asparagus (Asparagus officinalis L.) and socio-economic structure of producers. 2021. Р. 1092–1099.
Bratkov V. M., Shkondrov A. M., Zdraveva P. K., Krasteva I. N. Flavonoids from the Genus Astragalus: Phytochemistry and Biological Activity. Pharmacogn Rev. 2016. № 10 (19). Р. 11–32.
Wang C., Cheng D., Zhao D. et al. Chemical constituents of Asparagus officinalis. Chemistry of Natural Compounds. 2023. № 59 (2). Р. 410–411.
Фармацевтична енциклопедія / гол ред. ради В. П. Черних. 3-тє вид., переробл. і доповн. Київ : МОРІОН, 2016. 1952 с.
Івченко Т. В., Лялюк О. С. Вплив гібрида і способів вирощування Asparagus officinalis L. на строки надходження спаржі в умовах Лісостепової зони України. Аграрні інновацїі. Меліорація, землеробство, рослинництво. 2022. № 14. С. 44–50.
Івченко Т. В., Лялюк О. С. Ефективність короткострокового зберігання спаржі зеленої. Аграрні інновацїі. 2022. № 11. С. 32–40.
Chen W. P. et al. Microscale analysis of amino acids using gas hromatography – massspectrometry after methyl chloroformate derivatization. Journal of hromatography. 2010. 878 (24). P. 2199–2208. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jchromb.2010.06.027
Vancompernolle B., Croes K., Angenon G. Optimization of a gas chromatography-mass spectrometry method with methyl chloroformate derivatization for quantification of amino acids in plant tissue. Journal of Chromatography. 2016. Т. 1017. P. 241–249.
Nguyen T. V., Alfaro A. C., Young T. Protocol for Methyl ChloroFormate (MCF) Derivatization of Extracted Metabolites from Marine Bivalve Tissues. 2018. P. 1–2.
Kolukisaoglu Ü. D-amino acids in plants: sources, metabolism, and functions. International Journal of Molecular Sciences. 2020. 21 (15). 5421 p.
Umumararungu T., Gahamanyi N., Mukiza J. et al. Proline, a unique amino acid whose polymer, polyproline II helix, and its analogues are involved in many biological processes : a review. Amino acids. 2024. 56 (1). P. 50. DOI: https://doi.org/10.1007/s00726-024-03410-9
Lyu H., Bao S., Cai L. et al. The role and research progress of serine metabolism in tumor cells. Front Oncol. 2025. Apr 8.15. P. 1509662. DOI: 10.3389/ fonc.2025.1509662
He L., Ding Y., Zhou X. et al. Serine signaling governs metabolic homeostasis and health. Trends in endocrinology and metabolism: TEM. 2023. 34 (6). P. 361–372. DOI: https://doi.org/10.1016/j.tem.2023.03.001
Holowaty M. N. H., Lees M. J., Abou Sawan S. et al. Leucine ingestion promotes mTOR translocation to the periphery and enhances total and peripheral RPS6 phosphorylation in human skeletal muscle. Amino acids. 2023. 55 (2). P. 253–261. DOI: https://doi.org/10.1007/ s00726-022-03221-w
D’Hulst G., Masschelein E., De Bock K. Resistance exercise enhances long-term mTORC1 sensitivity to leucine. Molecular metabolism. 2022. 66. P. 101615. DOI: https://doi.org/10.1016/ j.molmet.2022.101615
Wang C., Peng Y., Zhang Y., Xu J., Jiang S., Wang L., Yin Y. The biological functions and metabolic pathways of valine in swine. Journal of animal science and biotechnology. 2023. 14 (1). P. 135. DOI: https://doi.org/ 10.1186/s40104-023-00927-z
Du C., Liu W. J., Yang J. et al. The Role of Branched-Chain Amino Acids and Branched-Chain α-Keto Acid Dehydrogenase Kinase in Metabolic Disorders. Frontiers in nutrition. 2022. 9. P. 932670. DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2022.932670
Yu D., Richardson N. E., Green C. L. et al. The adverse metabolic effects of branched-chain amino acids are mediated by isoleucine and valine. Cell metabolism. 2022. 33 (5). P. 905–922.e6. DOI: https://doi.org/ 10.1016/j.cmet.2021.03.025
Shnitko T. A., Taylor S. C., Stringfield S. J. et al. Acute phenylalanine/tyrosine depletion of phasic dopamine in the rat brain. Psychopharmacology. 2016. 233 (11). P. 2045–2054. DOI: https://doi.org/10.1007/ s00213-016-4259-0
Shnitko T. A., Taylor S. C., Stringfield S. J. et al. Acute phenylalanine/tyrosine depletion of phasic dopamine in the rat brain. Psychopharmacology. 2016. 233 (11), P. 2045–2054. DOI: https://doi.org/10.1007/ s00213-016-4259-0//
Liu W., Sun M., He Y. et al. Quality Evaluation of Asparagus officinalis by Profile of Amino Acids and Mineral Elements in Different Parts Combined with Chemometrics Methods. Chemistry & biodiversity. 2024. 21 (3). P. e202301754. DOI: https://doi.org/10.1002/ cbdv.202301754
Gębczyński P. Content of selected antioxidative compounds in green asparagus depending on processing before freezing and on the period and conditions of storage. Polish Journal of Food and Nutrition Sciences. 2007. 57. P. 209–214.
Słupski J., Korus A., Lisiewska Z., Kmiecik W. Content of amino acids and the quality of protein in as-eaten green asparagus (Asparagus officinalis L.) products. International Journal of Food Science and Technology. April 2010. Vol. 45. Is. 4. P. 733–739. DOI: https://doi.org/10.1111/j.1365-2621.2010.02193.x
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2026 Медична та клінічна хімія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
