ОСОБЛИВОСТІ ІМУННОЇ РЕАКЦІЇ ОКА КРОЛІВ З МЕХАНІЧНОЮ ТРАВМОЮ РОГІВКИ І ЗА ЇЇ КОРЕКЦІЇ СТОВБУРОВИМИ КЛІТИНАМИ
DOI:
https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2025.i2.15521Ключові слова:
травма рогівки; корекція; Корнерегель; стовбурові клітини; імунна система; цитокіни.Анотація
Вступ. Дослідження в області офтальмології показали значну роль цитокінів як ключових біорегуляторів запальних і репаративних процесів у патогенезі захворювань очей. Мета дослідження – вивчення змін показників клітинного імунітету і цитокінового профілю у крові та водянистій волозі передньої камери ока кролів, яким моделювали механічну непроникаючу травму рогівки і проводили корекцію із застосуванням Корнерегелю і мезенхімальних стовбурових клітин (МСК). Методи дослідження. Тваринам наносили епітеліальну насічку на верхню частину рогівки за допомогою трепана, після чого видаляли епітелій разом із переднім шаром строми рогівки. Анестезія здійснювалася місцево за допомогою 0,5 % розчину алкаїну та 2 % розчину лідокаїну. Для корекції використовували препарат Корнерегель і мезенхімальні стовбурові клітини, отримані із пупового канатика. Рівень CD4+ і CD8+ цитометричним методом. Концентрації фактора некрозу пухлини-α, інтерлейкіну-1β, інтерлейкіну-6 та інтерлейкіну-10 визначали за допомогою імуноферментного аналізу. Розраховували також імунорегуляторний індекс (CD4+/CD8+) та індекс запальної активності ((TNF–α)+ (ІL–1β)+ (ІL–6)/ (ІЛ–10)). Результати й обговорення. Після моделювання механічної травми спостерігалося нерівномірне підвищення рівня Т-хелперів і Т- супресорів, що призвело до достовірного зниження імунорегуляторного індекса, а також значне зростання прозапальних цитокінів (TNF–α, ІL–1β, ІL–6). Концентрація протизапального цитокіна (ІL-10) зростала менш інтенсивно на початкових етапах і знизилася до 28-ї доби, що призвело до достовірного зростання індекса запальної активності, Використання коригуючих чинників супроводжувалось менш виразним зростанням показників клітинного імунітету і нормалізацією їх співвідношення, а також значно меншим зростанням рівня прозапальних і протизапального цитокінів із нормалізацією до 28-ої доби індекса запальної активності. Висновки. За умов механічної травми рогівки уведення мезенхімальних стовбурових клітин ефективно модулює імунну відповідь в оці, знижує рівні прозапальних цитокінів (TNF-α, IL-1β, IL-6) та підвищує рівень протизапального цитокіна IL-10, тим самим нормалізуючи рівень запальної активності.
Посилання
Domingo E., Moshirfar M., Zeppieri M. та ін. Corneal Abrasion. StatPearls [Internet]. Treasure Island (FL) : StatPearls Publishing, 2025 Jan [оновлено 2024 Jan 8] . URL: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK532960/.
Aalam W., Barry M., Alharbi M., Tamur S., Wazzan A., Edward D.P. Diagnosis and Management of Corneal Abrasion Perception of (Primary Health Care Physicians and Emergency Physicians) and its Determinants in Saudi Arabia – A Survey. Middle East Afr J Ophthalmol. 2021 Jul‑Sep. Т. 28, № 3. С. 151–158.
Wipperman J. L., Dorsch J. N. Evaluation and management of corneal abrasions. Am Fam Physician. 2013 Jan 15. Т. 87, № 2. С. 114–120.
Smith D., Keith W., Stack L. The Epidemiology and Diagnosis of Penetrating Eye Injuries. Acad. Emerg. Med. 2002. Т. 9, № 3. С. 209–213.
Gavrylyak I., Zhaboiedov D., Greben N., Tykhomyrov A. Tear lactoferrin and ceruloplasmin levels in patients with traumatic and recurrent corneal erosions. J. ophthalmol. (Ukraine) [Internet]. 2024 Feb 29 [цит. 2024 Apr 10]. № 1. С. 8–14.
Wilson S. E. Corneal wound healing. Exp Eye Res. 2020. Т. 197. С. 108089. DOI: 10.1016/j. exer.2020.108089.
Streilein J. Immune regulation and the eye: a dangerous compromise. FASEB J. 1987. Т. 1, № 3. С. 199–208.
Нестерук С., Кліщ І. Особливості змін показників гуморального та клітинного імунітету в крові кролів за умов механічної непроникаючої травми рогівки. Експерим. клін. мед. 2020. Т. 78, № 1. С. 46–51.
Sharif Z., Sharif W. Corneal neovascularization: updates on pathophysiology, investigations & management. Rom J Ophthalmol. 2019. Т. 63, № 1. С. 15–22.
Lopez‑Paniagua M., Mesia R., Khandhadia S. Immunologic response of the rabbit cornea to xenogenic and allogeneic mesenchymal stem cells. Investig. Ophthalmol. Vis. Sci. 2009. Т. 50, № 6. С. 2872. DOI: https://iovs.arvojournals.org/article. aspx?articleid=2364193.
Mohan R. R., Kempuraj D., D'Souza S., Ghosh A. Corneal stromal repair and regeneration. Prog Retin Eye Res. 2022. Т. 91. С. 101090 DOI: 10.1016/j. preteyeres.2022.101090.
Dong C., He M., Hu Y., Liang Y. Ex vivo cultivated retinal pigment epithelial cell transplantation for the treatment of rabbit corneal endothelial dysfunction. Eye Vis. 2023. Вип. 10. С. 17. DOI: 10.1186/ s40662‑023‑00351‑4.
Arnalich‑Montiel F., Pastor S., Blázquez‑ Martínez A., Fernández‑Delgado J., Nistal M., Alió J.L. Adipose‑derived stem cells are a source for cell therapy of the corneal stroma. Stem Cells. 2008. Т. 26, № 2. С. 570–579. DOI: 10.1634/stemcells.2007‑0552.
Nicula C., Szabo I., Ivan O. Stem cells treatment in the ocular surface regeneration. Rom J Ophthalmol. 2017. Т. 61, № 4. С. 239–243.
Call M., Elzarka M., Kunesh M., Hura N., Birk D. E., Kao W. W. Therapeutic efficacy of mesenchymal stem cells for the treatment of congenital and acquired corneal opacity. Mol Vis. 2019. № 25. С. 415–426.
Yao L., Li Z. R., Su W. R., Li Y. P., Lin M. L., Zhang W. X., Liu Y., Wan Q., Liang D. Role of mesenchymal stem cells on cornea wound healing induced by acute alkali burn. PLoS One. 2012. Т. 7, № 2. С. e30842. DOI: 10.1371/journal.pone.0030842.
European convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes / Council of Europe. Strasbourg: Council of Europe, 1986. № 123. С. 52.
Науково‑практичні рекомендації з утримання лабораторних тварин та роботи з ними / Кожем’якін Ю. М., Хромов О. С., Філоненко М. А., Сайфетдінова Г. А. Київ : Авіцена, 2002. 156 с.
Шмир С. М., Кліщ І. М. Цитокіновий статус сироватки крові кролів з механічною непроникаючою травмою рогівки та корекція з використанням строми ксенорогівки, отриманої методом децелюляризації. Med. Clin. Chem. 2023. № 2. DOI: 10.11603/ mcch.2410‑681X.2023.i2.13968.
Rihawi S., Frentz M., Schrage N. F. Emergency treatment of eye burns: which rinsing solution should we choose? Graefes Arch Clin Exp Ophthalmol. 2006. Т. 244, № 7. С. 845–854.
Турчин М. В., Кліщ І. М. Особливості імунологічної реактивності за умови експериментальної механічної непроникаючої травми рогівки при консервативному і хірургічному лікуванні. Journal of Health Sciences. 2014. Т. 4, № 11. С. 397–402.
Torres P., Kijlstra A. The role of cytokines in corneal immunopathology. Ocular Immunol. Inflamm. 2009. С. 9–24.
Boehm N. Proinflammatory cytokine profiling of tears from dry eye patients by means of antibody microarrays. Investig. Ophthalmol. 2011. Т. 52. С. 7725–7730.
Шмир С., Кліщ І. Показники прозапальних цитокінів у водянистій волозі передньої камери ока кролів з механічною травмою рогівки та використанні строми ксенорогівки свині, отриманої методом децелюляризації для корекції. Grail of Science. 2023. Т. 32. С. 390–391. DOI: 10.36074/ grail-of-science.13.10.2023.074.
Kumar A., Yun H., Funderburgh M. L., Du Y. Regenerative therapy for the Cornea. Prog Retin Eye Res. 2022. Т. 87. С. 101011. DOI: 10.1016/ j.preteyeres.2021.101011.
##submission.downloads##
Опубліковано
Як цитувати
Номер
Розділ
Ліцензія
Авторське право (c) 2025 Медична та клінічна хімія
Ця робота ліцензується відповідно до Creative Commons Attribution 4.0 International License.
