Investigation of antigen-presenting cells in the intestinal mesentery in normal and adhesive processes

Оксана Кущ; Анастасія Пайдаркіна

doi:10.61751/bmbr/3.2024.32

Автор(и)

Оксана Кущ Запорізький національний університет https://orcid.org/0000-0003-3827-3752
Анастасія Пайдаркіна Запорізький національний університет https://orcid.org/0009-0001-4436-1532

DOI:

https://doi.org/10.61751/bmbr/3.2024.32

Ключові слова:

очеревина, дендритні клітини, імунітет, лектини, щури, лімфоцит, гістологічні зміни

Анотація

Питання морфології і топографії дендритних клітин брижі тонкої кишки, їх кількість, наявність у нормі та при прогресуючих спайкових процесах вивчені недостатньо і постають актуальним питанням імуноморфології. Метою роботи було виявлення і визначення функціональної активності антигенпрезентуючих клітин методом лектинової гістохімії за допомогою лектинів арахісу та сочевиці у нормі та при спайкових процесах. Перелік використаних методів: морфометричний, лектингістохімічний, статистичний. Вперше за допомогою лектинової гістохімії із використанням лектинів сочевиці і сої виявлено функціонально активні та імунологічно незрілі антигенпрезентуючі клітини в структурі лімфоїдних кластерів брижі тонкої кишки. Встановлено закономірність між прогресуванням процесів спайкоутворення та кількістю антигенпрезентуючих клітин. Виявлено кореляційні зв'язки між дендритними клітинами та кількістю імунологічно незрілих лімфоцитів і В-лімфоцитів, що поглибило уявлення про функціональні механізми локальної ланки вродженого імунітету. Проаналізовано тенденцію зростання імунологічно незрілих лімфоцитів і В-лімфоцитів на тлі збільшення антигенпрезентуючих клітин. Результати показали, що активація дендритних клітин в тканинах брижі викликає збільшення імунологічно незрілих лімфоцитів, з яких в подальшому походять B-лімфоцити і ініціюють місцеву імунну відповідь. Підвищення частоти виявлення PNA+- і LCA+- антигенпрезентуючих клітин вказує на підвищену імунореактивність лімфоїдних кластерів. Дане дослідження розподілу антигенпрезентуючих клітин доповнює розуміння структури лімфоїдої тканини, пов'язаної з серозними оболонками, а також жироасоційованих лімфоїдних скупчень, і підкреслює зв'язок між вродженим і адаптивним імунітетом в черевній порожнині

Отримано: 16.05.2024 | Переглянуто: 25.07.2024 | Прийнято: 30.08.2024

Біографії авторів

Оксана Кущ, Запорізький національний університет

Доктор біологічних наук, професор 69600, вул. Жуковського, 66, м. Запоріжжя, Україна

Анастасія Пайдаркіна, Запорізький національний університет

Аспірант 69600, вул. Жуковського, 66, м. Запоріжжя, Україна

Посилання

Kashyap AS, Fernandez-Rodriguez L, Zhao Y, Monaco G, Trefny MP, Yoshida N, et al. GEF-H1 signaling upon microtubule destabilization is required for dendritic cell activation and specific anti-tumor responses. Cell Rep. 2019;28(13):3367–80.e8. DOI: 10.1016/j.celrep.2019.08.057

Repáraz D, Hommel M, Navarro F, Llopiz D. The role of dendritic cells in the immune niche of the peritoneum. Int Rev Cell Mol Biol. 2022;371:1–14. DOI: 10.1016/bs.ircmb.2022.04.012

Yun TJ, Igarashi S, Zhao H, Perez OA, Pereira MR, Zorn E, et al. Human plasmacytoid dendritic cells mount a distinct antiviral response to virus-infected cells. Sci Immunol. 2021;6(58):eabc7302. DOI: 10.1126/sciimmunol.abc7302

Jawanda MK, Narula R, Mathur N, Singh J, Singh D. Non-Hodgkin's lymphoma of mandible in a young male. J Pierre Fauchard Acad (India Sect). 2017;31(1):18–21. DOI: 10.1016/j.jpfa.2017.01.001

Simplicien M, Barre A, Benkerrou Y, Van Damme EJM, Rougé P, Benoist H. The T/Tn-specific Helix pomatia lectin induces cell death in lymphoma cells negative for T/Tn antigens. Cancers. 2021;13(17):4356. DOI: 10.3390/cancers13174356

Liu M, Silva-Sanchez A, Randall TD, Meza-Perez S. Specialized immune responses in the peritoneal cavity and omentum. J Leukoc Biol. 2021;109(4):717–29. DOI: 10.1002/JLB.5MIR0720-271RR

Jackson-Jones LH, Bénézech C. FALC stromal cells define a unique immunological niche for the surveillance of serous cavities. Curr Opin Immunol. 2020;64:42–49. DOI: 10.1016/j.coi.2020.03.008

van Uden D, Boomars K, Kool M. Dendritic cell subsets and effector function in idiopathic and connective tissue disease-associated pulmonary arterial hypertension. Front Immunol. 2019;10:11. DOI: 10.3389/fimmu.2019.00011

Volyanska AG, Syvokonyuk OV. Comparative analysis of barium sulfate and talc in strength of adhesive process in female rats. Integr Anthropol. 2012;1(19):58–61.

Reznikov O. General ethical principles of experiments on animals. Endocrinology. 2003;8(1):142–45.

Lutsyk A. Lectins in histochemistry. Lviv: Higher School Publishing House near Lviv University of Technology; 1989. 144 p.

Paidarkina A, Kushch O. Peritoneal remodeling and changes in its lymphoid component in experimental modeling of adhesion disease in rats. SciRise Biol Sci. 2024;1(38):10–16. DOI: 10.15587/2519-8025.2024.301278

Paidarkina AP, Kushch OG. Peculiarities of the distribution of PNA+-immunologically immature lymphocytes in the intestinal mesentery of rats in normal conditions and during the adhesion process. In: Paidarkina AP, Kushch OG, editors. Materials of the All-Ukrainian Scientific and Practical Conference with International Participation “Morphogenesis and Regeneration” (IV Zhutaev Readings); 2024; Poltava. Poltava, Ukraine: Poltava State Medical University; 2024. P. 47–54.

Ksyonz I, Kostylenko Y, Liakhovskyi V, Konoplitskyi V, Maksimovskyi V. Milky spots in the greater omentum. Actual Probl Modern Med: Bull Ukr Med Stomatol Acad. 2023;23(2):135–40. DOI: 10.31718/2077-1096.23.2.2.135

Wang AW, Prieto JM, Cauvi DM, Bickler SW, De Maio A. The greater omentum – a vibrant and enigmatic immunologic organ involved in injury and infection resolution. Shock. 2020;53(4):384–90. DOI: 10.1097/SHK.0000000000001428

Suen JL, Chang Y, Shiu YS, Hsu CY, Sharma P, Chiu CC, et al. IL-10 from plasmacytoid dendritic cells promotes angiogenesis in the early stage of endometriosis. J Pathol. 2019;249(4):485–97. DOI: 10.1002/path.5339

Lamendour L, Deluce-Kakwata-Nkor N, Mouline C, Gouilleux-Gruart V, Velge-Roussel F. Tethering innate surface receptors on dendritic cells: A new avenue for immune tolerance induction?. Int J Mol Sci. 2020;21(15):5259. DOI: 10.3390/ijms21155259

Sancho D, Reis e Sousa C. Signaling by myeloid C-type lectin receptors in immunity and homeostasis. Annu Rev Immunol. 2012;30:491–29. DOI: 10.1146/annurev-immunol-031210-101352

Binnewies M, Mujal AM, Pollack JL, Combes AJ, Hardison EA, Barry KC, et al. Unleashing type-2 dendritic cells to drive protective antitumor CD4+ T cell immunity. Cell. 2019;177(3):556–71.e16. DOI: 10.1016/j.cell.2019.02.005

Laginha PA, Arcoverde FVL, Riccio LGC, Andres MP, Abrão MS. The role of dendritic cells in endometriosis: A systematic review. J Reprod Immunol. 2022;149:103462. DOI: 10.1016/j.jri.2021.103462

Qiaomei Z, Ping W, Yanjing Z, Jinhua W, Shaozhan C, Lihong C. Features of peritoneal dendritic cells in the development of endometriosis. Reprod Biol Endocrinol. 2023;21(1):4. DOI: 10.1186/s12958-023-01058-w

Gardner A, de Mingo Pulido Á, Ruffell B. Dendritic cells and their role in immunotherapy. Front Immunol. 2020;11:924. DOI: 10.3389/fimmu.2020.00924