ЗАГАЛЬНА ОКСИДАНТНА ТА АНТИОКСИДАНТНА АКТИВНІСТЬ ПРИ АЛОТРАНСПЛАНТАЦІЇ ЕМБРІОНАЛЬНОЇ ЧЕРЕВНОЇ М’ЯЗОВОЇ ТКАНИНИ В ЩУРІВ
DOI:
https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2019.v0.i1.10009Ключові слова:
алотрансплантація, м’язова тканина, ембріональна тканина, агальна антиокси- дантна активність, оксидативний стресАнотація
Вступ. Алотрансплантація ембріональної тканини є одним з актуальних напрямків у сучасній теоретичній і медичній біохімії, які розробляють для стимуляції та відновлення функцій організму. Алотрансплантацію ембріональної тканини розглядають як можливу альтернативу традиційним, консервативним методам лікування, а також як методологічну основу експериментальних розробок.
Мета дослідження – вивчити вплив алотрансплантації ембріональної черевної м’язової тканини в щурів на загальну оксидантну та антиоксидантну активність.
Методи дослідження. Для алотрансплантації ембріональної м’язової тканини використовували ембріонів строком 2–3 тижні. Під ефірним наркозом в асептичних умовах тварину фіксували до хірургічної дошки в положенні лежачи на спині, операційне поле виголювали і тричі обробляли антисептиком. В ембріонів вилучали черевну м’язову тканину, яку фіксували лігатурою до черевної стінки дорослого щура. Рану пошарово щільно зашивали вузловим швом. Алотрансплантацію проводили згідно з хірургічними правилами операцій на м’язах. Досліджувані показники визначали на першу, третю та сьому доби після операційного втручання в тканині донора та тканині реципієнта. Підсадку сформованої тканини та удавану операцію проводили для того, щоб виключити дію як самої операції, так і ефекту підсадки тканини, щоб виявити дію ембріональної тканини на сформовану. Тому кожен показник досліджували не тільки при підсадці ембріональної тканини, але й при удаваній операції та підсадці сформованої тканини до сформованої, і порівнювали аналогічні показники при всіх цих трьох видах втручань.
Результати й обговорення. Отримані результати щодо загальної оксидантної активності свідчать про те, що удавана операція та алотрансплантація ембріональної тканини призвели до розвитку оксидативного стресу в досліджуваних м’язах.
Висновки. Загальна оксидантна активність проявляється лише на сьому добу дослідження як при удаваній операції, так і при алотрансплантації ембріональної м’язової тканини в усіх досліджуваних тканинах. Загальна антиоксидантна активність визначається в усі строки дослідження після проведення всіх хірургічних маніпуляцій як у тканині донора, так і в тканині реципієнта.
Посилання
Stankov, D.S., Katunyan, P.I., & Krasheninnikov, N.E. (2003). Neyrotransplantasiya v lechenii travmi spinnogo mozga [Neurotransplantation in the treatment of spinal cord injury]. Russian Journal of Transplantology and Artificial Organs, 1, 44-45 [in Russian].
Pochernyaeva, V.F., Tsebrzhinskiy, O.I., & Shish, N.V. (2006). Determination of sources of reactive oxygen species. Bucovinskyi medical Visnyk, 9 (2), 214-215.
Kozakowska, M., Pietraszek-Gremplewicz, K., Jozkowicz, A., & Dulak, J. (2015). The role of oxidative stress in skeletal muscle injury and regeneration: focus on antioxidant enzymes. Journal of Muscle Research and Cell Motility, 36 (6), 377-393. doi: 10.1007/s10974-015-9438-9
Lebedeva, A.I., Muslimov, S.A., Musina, L.A., & Shcherbakov, D.A. (2014). Regeneratsiya skeletnoy myshechnoy tkani eksperimentalnikh zhivotnikh, indutsirovannaya biomaterialom Alloplant [Regeneration of skeletal muscle tissue of the experimental animals induced Alloplant biomaterial]. International Journal of Experimental Education, 3, 68-71 [in Russian].
Littmann, I. (1985). Operative surgery. Budapest: Publishing house of the Academy of Sciences of Hungary.
Goryachkovskiy, А.М. (2005). Klinicheskaya biokhimiya v laboratornoy diagnostikе [Clinical biochemistry in laboratory diagnostics]. Odessa: Ekologiya - 3rd edition, revised and enlarged [in Russian].
Gierer, P., Röther, J., Mittlmeier, T., Gradl, G., & Vollmar, B. (2010). Ebselen reduces inflammation and microvascular perfusion failure after blunt skeletal muscle injury of the rat. Journal Trauma, 68 (4), 853-858. DOI: 10.1097/TA.0b013e3181b28a18.
Ghaly, A., & Marsh, D. (2010). Aging-associated oxidative stress modulates the acute inflammatory response in skeletal muscle after contusion injury. Experimental Gerontology, 45, 381-388. DOI: 10.1016/j.exger.2010.03.004.
Kulibaba О.V. (2015). Vmist malonovoho dialdehidu pry alotransplantasii embrionalnykh miazovykh tkanyn u shchuriv [The content of malondialdehyde in the embryonic muscle tissues allotransplantation in rats]. Odeskyi medychnyi zhurnal – Odesa Medical Journal, 5 (151), 11-14 [in Ukrainian].
Nikolaieva, О.V., Kobуlnik, S.M., Kahliak, M.D., & Petrov, S.A. (2018). Vyznachennia zahalnoi oksydantnoi aktyvnosti pry alotransplantatsii embrionalnoi miazovoi tkanyny u shchuriv [Estimation of total oxidation activity in embryonic muscle tissue allotransplantation in rats]. Materials of the International Scientific and Practical Conference “Development of Natural Sciences: Problems and Solutions, Brno. (pp.199-202) [in Ukrainian].
Menshikova, E.B., Lankin, V.Z., & Zenkov, N.K. (2006). Oxidativnyy stress. Prooksidanty i antioksidanty [Oxidative stress. Prooxidants and antioxidants]. Moscow: Slovo [in Russian].
Kulibaba, O.V., & Petrov, S.A. (2014). Condition of glutathione (GSH) metabolism system at allotransplantation of embryonic muscule tissue at rats. 2nd Eurasion Multidisciplinary Forum, 2, 202-206.
Barbieri, E., & Sestili, P. (2012). Reactive oxygen species in skeletal muscle signaling. Journal of Signal Transduction, 982794. Doi: 10.1155/2012/982794.
Kim, J.H., Kwak, H.B., Thompson, L.V., & Lawler, M. (2013). Contribution of oxidative stress to pathology in diaphragm and limb muscles with Duchenne muscular dystrophy. Journal of Muscle Research and Cell Motility, 34 (1), 1-13. DOI: 10.1007/s10974-012-9330-9.
Powers, S.K., Ji, L.L., Kavazis, A.N., & Jackson, M.J. (2011). Reactive oxygen species: impact on skeletal muscle. Comprehensive Physiology, 1 (2), 941-969. doi: 10.1002/cphy.c100054.
Kaczor, J.J., Hall, J.E., Payne, E. & Tarnopolsky, M.A. (2007). Low intensity training decreases markers of oxidative stress in skeletal muscle of mdx mice. Free Radical Biology & Medicine, 43 (1), 145-154. DOI: 10.1016/j.freeradbiomed.2007.04.003.
