Метаболізм цистеїну при експериментальному гіпер- та гіпотиреозі в щурів

Автор(и)

  • V. M. Nechyporuk Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова
  • M. M. Korda Тернопільський державний медичний університет імені І.Я. Горбачевського

DOI:

https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2017.v0.i4.8433

Ключові слова:

тиреоїдні гормони, цикл десульфурування, цистеїн, глутатіон.

Анотація

Вступ. Cірковмісні амінокислоти забезпечують процеси життєдіяльності клітин, підтримують цілісність їх редокс-потенціалу, знешкоджують вільні радикали та токсичні агенти, забезпечують процеси метилування і транссульфування. Відомо, що цистеїн утворюється в клітинах з гомоцистеїну, а використовуватися може, залежно від потреб клітини, на синтез білка, глутатіону, в десульфуразному шляху з утворенням гідроген сульфіду. Регуляція метаболізму сірковмісних амінокислот здійснюється на різних рівнях, у тому числі й ендокринною системою, зокрема тиреоїдними гормонами.

Мета дослідження – в експерименті вивчити вплив функціонального стану щитоподібної залози на активність ензимів циклу обміну цистеїну в тканинах печінки, нирок, мозку, міокарда, встановити вміст цистеїну, відновленого глутатіону та гідроген сульфіфду в крові.

Методи дослідження. У роботі використано 40 щурів-самців масою 150–180 г. Для моделювання гіпер- і гіпотиреоїдизму тваринам щоденно протягом 14-ти і 21-ї діб ентерально вводили розчин L-тироксину (200 мкг/добу на 1 кг маси) або мерказолілу (10 мг/добу на 1 кг маси). У мозку щурів визначали десульфуразну активність ензимів цистатіонін-β-синтази і цистатіонін-γ-ліази, в крові – вміст цистеїну, гомоцистеїну і гідроген сульфіду.

Результати й обговорення. Щурам вводили L-тироксин та мерказоліл для моделювання станів гіпер- та гіпотиреозу, які підтверджували за вмістом вільного трийодтироніну, вільного тироксину і тиреотропного гормону в крові. В органах тварин з гіпотиреозом спостерігали зниження активності цистатіонін-β-синтази, цистатіонін-γ-ліази і цистеїнамінотрансферази. Водночас введення L-тироксину призводило до підвищення активності даних ензимів у нирках та мозку. Гіпертиреоз супроводжувався зниженням, а гіпотиреоз не вплинув на концентрацію глутатіону в крові та на його вміст в органах тварин. Встановлено достовірне зниження концентрації гідроген сульфіду в крові при гіпотиреозі.

Висновок. Ураження серцево-судинної системи при гіпотиреозі може бути наслідком порушення процесів десульфурування в органах і тканинах, введення L-тироксину призводить до зниження синтезу глутатіону в сироватці та органах тварин, що може бути однією з причин розвитку оксидативного стресу в пацієнтів з гіпертиреозом.

Біографія автора

V. M. Nechyporuk, Вінницький національний медичний університет імені М.І. Пирогова

 

Посилання

Stipanuk, M.H.,& Ueki, I. (2011) Dealing with methionine/homocysteine sulfur: cysteine metabolism to taurine and inorganic sulfur. J. Inherit. Metab. Dis., 34(1), 17-32. doi: 10.1007/s10545-009-9006-9.

Pajares, M.A.,& Pérez-Sala, D. (2017). Mammalian sulfur amino acid metabolism: a nexus between redox regulation, nutrition, epigenetics and detoxification. Antioxid. Redox. Signal. doi: 10.1089/ars.2017.7237.

Iciek, M., Kowalczyk-Pachel, D., Bilska-Wilkosz, A., Kwiecień, I., Górny, M., &Włodek, L. (2015). S-sulfhydration as a cellular redox regulation. Biosci. Rep., 36 (2). pii: e00304. doi: 10.1042/BSR20150147.

Powell, C.R., Dillon, K.M.,& Matson, J.B. (2017) A review of hydrogen sulfide (H2S) donors: Chemistry and potential therapeutic applications. Biochem. Pharmacol. pii: S0006-2952(17)30695-0. doi: 10.1016/j.bcp.2017.11.014.

Chen, W., Guo, J.X.,& Chang, P.(2012). The effect of taurine on cholesterol metabolism. Mol. Nutr. Food. Res., 56(5), 681-690. doi: 10.1002/mnfr.201100799.

Wang, R. (2010). Hydrogen sulfide: the third gasotransmitter in biology and medicine.Antioxid. Redox Signal, 12(9), 1061-1064.

Kimura, H. (2011) Hydrogen sulfide: its production, release and functions.Amino Acids, 41 (1), 113-121. doi: 10.1007/s00726-010-0510-x.

Paul, B.D., & Snyder, S.H. (2015) H2S: A novel gasotransmitter that signals by sulfhydration. Trends in Biochemical Sciences, 40 (11), 687-700. DOI: 10.1016/j.tibs.2015.08.007.

Zhao, K., Li, H., Li, S., & Yang, G. (2014) Regulation of cystathionine gamma-lyase/H2S system and its pathological implication. Front Biosci. (Landmark Ed),19, 1355-1369.

Olson, K.R., DeLeon, E.R., Gao, Y., Hurley, K., Sadauskas, V., Batz, C., & Stoy, G.F.(2013). Thiosulfate: a readily accessible source of hydrogen sulfide in oxygen sensing. American Journal of Physiology – Regulatory, Integrative and Comparative Physiology, 305(6), 592-603. DOI: 10.1152/ajpregu.00421.2012.

Gaitonde,M.K. (1967) Aspectrophotometricmethodfordirectdeterminationofcysteineinthepresenceofothernaturallyoccuringaminoacid. Biochem. J., 104 (2), 627-633.

Verbunt, R.J., van Dockum, W.G., Bastiaanse, E.M., Egas J.M.,& van der Laarse, A. (1995) Glutathione disulfide as an index of oxidative stress during postischemic reperfusion in isolated rat hearts. Mol Cell Biochem., 144(1), 85-93.

Zaichko, N.V., Melnyk, A.V.,& Pentiuk, N.O. (2010). Sposib vyznachennia vmistu hidrohen sulfidu plazmy krovi [Method for determination of content of hydrogensulfide in blood serum].Patent UA, No. 52136 [in Ukrainian].

Zaichko, N.V., Pentiuk, N.O., Melnyk, A.V.,& Shtatko,O.I. (2009). Sposib vyznachennia produktsii hidrohen sulfidu v orhanakh shchuriv [Method for determination of production of hydrogen-sulfide in animal organs].PatentUA, No. 45018 [in Ukrainian].

Orlowski, M.,& Mrister, A. (1971). Partial reaction by γ-glutamylcysteine synthetase and evidence for an activated glutamate intermediate.J. Biol. Chem., 246 (23), 7095-7105.

Stipanuk, M.H., De la Rosa J., Hirschberger L.L. (1990) Catabolism of cyst(e)ine by rat renal cortical tubules.J. Nutr., 120 (5),450-458.

Cohen, H.J.,& Fridovich, I. (1971) Hepatic sulfite oxidase. Purification and properties.J. Biol. Chem., 246 (2),359-366.

Nechiporuk, V., Zaichko, N., Korda, М., Melnyk, A., & Koloshko, O. (2017). Sulphur-containing amino acids exchange in cases of experimental hyper- and hypothyroidism in rats. Georgian Medical News, 10 (271), 96-102.

Hine,C., Kim,H.J., Zhu,Y., Harputlugil,E., Longchamp,A., Matos,M.S., … Ramadoss,P. (2017) Hypothalamic-pituitaryaxisregulateshydrogensulfideproduction. Cell Metabolism, 25 (6), 1320-1333 DOI: 10.1016/j.cmet.2017.05.003.

Sajadian,M.,Hashemi,M., Salimi,S.,&Nakhaee,A. (2016). Theeffectofexperimentalthyroiddysfunctiononmarkersofoxidativestressinratpancreas. Drug Development Research, 77 (4), 199-205. DOI: 10.1002/ddr.21312.

Rakoczy, J.,Lee, S., Weerasekera, S.J., Simmons, D.G.,& Dawson, P.A. (2015). Placental and fetal cysteine dioxygenase gene expression in mouse gestation. Placenta, 36 (8), 956-959. DOI: 10.1016/j.placenta.2015.06.003.

##submission.downloads##

Опубліковано

2018-01-11

Як цитувати

Nechyporuk, V. M., & Korda, M. M. (2018). Метаболізм цистеїну при експериментальному гіпер- та гіпотиреозі в щурів. Медична та клінічна хімія, (4), 32–40. https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2017.v0.i4.8433

Номер

Розділ

ОРИГІНАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ