ПЕРСПЕКТИВА ВИКОРИСТАННЯ СЛИЗУ РІЗНИХ ВИДІВ РАВЛИКІВ У МЕДИЦИНІ

T. A. Hroshovyi; B. V. Pavliuk; M. B. Chubka; M. M. Dobrynchuk

doi:10.11603/bmbr.2706-6290.2020.4.11371

Автор(и)

T. A. Hroshovyi Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського МОЗ України
B. V. Pavliuk Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського МОЗ України
M. B. Chubka Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського МОЗ України
M. M. Dobrynchuk Тернопільський національний медичний університет імені І.Я. Горбачевського МОЗ України

DOI:

https://doi.org/10.11603/bmbr.2706-6290.2020.4.11371

Ключові слова:

муцин, слиз, равлик, ліофілізація, технологія ліків

Анотація

Резюме. Здавна відомо про терапевтичні властивості слизу різних видів равликів. У світі зростає інтерес науковців щодо можливостей застосування слизу равликів різних видів, зокрема Helix pomatia, Helix aspersa maxima, Helix aspersa muller у медицині.

Мета дослідження – узагальнити дані літературних джерел щодо перспективності використання слизу равликів як активного фармацевтичного інгредієнта у медичній галузі та у фармацевтичній промисловості.

Матеріали і методи. Проаналізовано та узагальнено дані понад 50 джерел, із яких у даному огляді використано 30 джерел сучасної іноземної та вітчизняної літератури щодо доцільності використання слизу равликів у медицині, фармації та косметології. У дослідженні опрацьовано наукові публікації за останнє десятиліття, які доступні у мережі «Інтернет», ключовими словами були муцин, слиз, равлик, ліофілізація, технологія ліків.

Результати. На основі представлених літературних даних можна зробити висновок, що слиз равлика має велике практичне значення для різних галузей медицини (дерматологія, ортопедія, терапія), широко використовується у технології лікарських засобів як активний фармацевтичний інгредієнт та основа для трансдермальних терапевтичних систем. Фармакологічна активність слизу равликів забезпечується збагаченим хімічним складом, адже активними компонентами є протеоглікани, глікозаміноглікани (зокрема, гіалуронова кислота), глікопротеїнові ферменти, амінокислоти, пептиди (мідні, антимікробні), вітаміни (A, C, E, B₁ та B₆), макро- та мікроелементи (Na, Ca, K, Mg, P, Cu, Zn, Fe, Mn), муцин, колаген, гліколева кислота, еластин та алантоїн. Доведено, що слиз равликів має антиоксидантні, антибактеріальні, регенеративні, протизапальні властивості, а також при його застосуванні забезпечується зволожувальна, очищувальна та захисна дії.

Висновки. На сьогодні слиз равликів широко використовують у дерматології та косметології, що підтверджують результати фармакологічних досліджень. Актуальним та перспективним є використання слизу як основи-носія для створення лікарських засобів, а також як активного фармацевтичного інгредієнта з широким спектром фармакологічної дії.

Посилання

Trapella C, Rizzo R, Gallo S, Alogna A, Bortolotti D, Casciano F, et al. HelixComplex snail mucus exhibits pro-survival, proliferaive and pro-migration effects on mammalian fibroblasts. Scientific reports. 2018;8(17665): 1-10. Available from: https://doi.org/10.1038/s41598-018-35816-3

Bonnemain B. Helix and drugs: snails for health care from Antiquity to these days. Rev Hist Pharm. 2003;51(338): 211-8.

Bouchet P, Rocroi JP. Classification and nomenclator of gastropod families. Malacologia. 2005;47(1-2): 397.

Bonnemain B. Helix and drugs: snails for western health care from antiquity to these present. Evid Based Complement Alternat Med. 2005;2(1): 25-8. Available from: https://doi.org/10.1093/ecam/neh057

Jin A-H, Muttenthaler M, Dutertre S, Himaya SWA, Kaas Q, Craik DJ, et al. Conotoxins: Chemistry and Biology. Chem Rev. 2019;119(21): 11510-9. Available from: https://doi.org/10.1021/acs.chemrev.9b00207

Alameda MT, Morel E, Parrado C, Conzales S, Juarranz A. Cryptomphalus aspersa Mollusc Egg Extract Promotes Regenerative Effects in Human Dermal Papilla Stem Cells. Int J Mol Sci. 2017;18(2): 463. Available from: https://doi.org/10.3390/ijms18020463

https://www.istitutodielicicoltura.it/it/en/snail-slime

Greistorfer S, Klepal W, Cyran N, Gugumuck A, Rudoll L, Suppan J. et al. Snail mucus − glandular origin and composition in Helix pomatia. Zoology. 2017;122: 126-38. Available from: https://doi.org/10.1016/j.zool.2017.05.001

Gillis GB. Snail trails. J Exper Biol. 2007; 210. Available from: https://doi.org/10.1242/jeb.001073

Gesheva V, Chausheva S, Stefanova N, Mihaylova N, Doumanova L, Idakieva K, et al. Helix pomatia hemocyanin – a novel bio-adjuvant for viral and bacterial antigens. Int Immunopharmacol. 2015;26(1): 162-8. Available from: https://doi.org/10.1016/j.intimp.2015.03.011

Iglesias-de la Cruz MC, Sanz-Rodriguez F, Zamarron A, Reyes E, Carrasco E, Conzález S, et al. A secretion of the mollusc Cryptomphalus aspersa promotes proliferation, migration and survival of keratinocytes and dermal fibroblasts in vitro. Int J Cosmet Sci. 2012;34(2): 183-9. Available from: https://doi.org/10.1111/j.1468-2494.2011.00699.x

Hrychenichenko YD, Markina YL The use of achatina in cosmetology. [Использование ахатин в косметологии] Available from: https://journals.indexcopernicus.com/api/file/viewByFileId/935488.pd. Russian.

Laneri S, Lorenzo RD, Sacchi A, Dina I. Dosage of bioactive molecules in the nutricosmeceutical helix aspersa muller mucus and formulation of new cosmetic cream with moisturizing effect. Nat Prod Commun. 2019; 1-7. Available from: https://doi.org/10.1177/1934578X19868606

Harti AS, Sulisetyawati SD, Murharyati A., Oktaiani M. The effectiveness of snail slime and chitosan in wound healing. Int J Pharm Med and Biol Scienc. 2016;5(1): 76-80.

Thomas S. Medicinal use of terrestrial molluscs (slugs and snails) with particular reference to their role in the treatment of wounds and other skin lesions. Available from: http://www.worldwidewounds.com/2013/July/Thomas/slug-steve-thomas.html

Brieva A, Philips N, Tejedor R, Guerrero A, Pivel JP, Alonso-Lebrero JL, et al. Molecular basis for the regenerative properties of a secretion of the mollusk Cryptomphalus aspersa. Skin Pharmacol Physiol. 2008;21(1): 15-22. Available from: https://doi.org/10.1159/000109084.

Osoba IY. [Features of functioning of system of antioxidant protection of an organism]. Nauka rybnoho hospodarstva Ukrainy. 2009;1: 133-9. Ukrainian.

Muleta Andrade PH, Rondon ES, Carollo CA, Rodrigues Macedo ML, Viana LH, Schiaveto de Souza A, et al. Effect of powdered shells of the snail megalobulimus lopesi on secondary-intention wound healing in an animal model. J Evid Based Complementary Altern Med. 2015; 9. Available from: https://doi.org/10.1155/2015/120785.

https://sciencediscoveries.degruyter.com/snail-slug-slime-alternative-conventional-antibiotics

Zhong J, Wang W, Yang X, Yan X, Liu R. A novel cysteine-rich antimicrobial peptide from the mucus of the snail of Achatina fulica. Peptides. 2013;39: 1-5. Available from: https://doi.org/10.1016/j.peptides.2012.09.001

Herluinus Mafranenda DN, Kriswandini IL, Arijani ER. Antimicrobial proteins of Snail mucus (Achatina fulica) against Streptococcus mutans and Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Dental Journal. 2014;47(1): 31-6. Available from: https://doi.org/10.20473/j.djmkg.v47.i1.p31-36.

http://news.bbc.co.uk/2/hi/health/900869.stm.

https://www.lvrach.ru/2036/partners/15437139.

Sergysels R, Art G. A double-masked, placebo-controlled polysomnographic study of the antitussive effects of helicidine. Curr Ther Res Clin Exp. 2001;62: 35-47.

El Ouar I, Braicu C, Naimi D, Irimie A, Berindan-Neagoe I. Effect of Helix aspersa extract on TNFα, NF-κB and some tumor suppressor genes in breast cancer cell line Hs578T. Pharmacogn Mag. 2017;13(50): 281-5. Available from: https://doi.org/10.4103/0973-1296.204618

Valluru M, Staton CA, Reed MWR, Brown NJ. Transforming growth factor-β and endoglin signaling orchestrate wound healing. Front Physiol. 2011;2: 89. Available from: https://doi.org/10.3389/fphys.2011.00089.

Antonova OS, Yossifova L, Staneva R, Stevanovic S, Dolashka P, Toncheva D. Changes in the gene expression profile of the bladder cancer cell lines after treatment with Helix lucorum and Rapana venosa hemocyanin. J BUON. 2015;20(1): 180-7.

https://www.sciencedaily.com/releases/2019/11/ 191104112830.htm.

Yaksh TL, Annelies de Kater, Dean R, Best BM, Miljanich GP. Pharmacokinetic analysis of ziconotide (SNX-111), an intrathecal N-type calcium channel blocking analgesic, delivered by bolus and infusion in the dog. Neuromodulation. 2012;15(6): 508-19. Available from: https://doi.org/10.1111/j.1525-1403.2012.00479.x

Kim P. The use of ziconotide in private practice. Available from: https://www.asra.com/asra-news/article/152/the-use-of-ziconotide-in-private-practic.