РІВЕНЬ ВІДНОВЛЕНОГО ГЛУТАТІОНУ ПРИ КОЛОРЕКТАЛЬНОМУ РАКУ ЗА ВПЛИВУ 5-ФТОРУРАЦИЛУ І МОЛЕКУЛЯРНОГО ВОДНЮ

Автор(и)

  • О. О. Покотило ТЕРНОПІЛЬСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ МЕДИЧНИЙ УНІВЕРСИТЕТ ІМЕНІ І. Я. ГОРБАЧЕВСЬКОГО МІНІСТЕРСТВА ОХОРОНИ ЗДОРОВ’Я УКРАЇНИ
  • М. М. Корда ТЕРНОПІЛЬСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ МЕДИЧНИЙ УНІВЕРСИТЕТ ІМЕНІ І. Я. ГОРБАЧЕВСЬКОГО МІНІСТЕРСТВА ОХОРОНИ ЗДОРОВ’Я УКРАЇНИ

DOI:

https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2024.i3.14913

Ключові слова:

колоректальний рак, молекулярний водень, воднева вода, відновлений глу­татіон

Анотація

Вступ. Відновлений глутатіон відіграє дуже важливу роль у підтримці клітинного гомеостазу й окиснювально-відновного балансу, будучи важливим елементом внутрішньоклітинного захисту від активних форм кисню. Зменшення його вмісту нижче критичного порога вважають маркером окиснювального стресу, який лежить в основі патофізіології різноманітних дегенеративних захворювань, включаючи канцерогенез. При цьому є неоднозначні результати щодо взаємодії ксенобіотиків хіміотерапії з відновленим глутатіоном. Наявність окиснювального стресу при колоректальному раку потребує ефективної антиоксидантної терапії, а доведено, що молекулярний водень ефективно проявляє антиоксидантну дію.

Мета дослідження – оцінити вплив води, насиченої молекулярним воднем, і 5-фторурацилу на вміст відновленого глутатіону в сироватці крові білих щурів з колоректальним раком.

Методи дослідження. Досліди проведено на 70 білих щурах-самцях лінії Вістар. Тваринам моделювали колоректальний рак (КРР) шляхом підшкірного введення 1,2-диметилгідразину в дозі 7,2 мг/кг маси тіла 1 раз на тиждень упродовж 30 тижнів. 5-Фторурацил вводили внутрішньочеревно 4 дні по 12 мг/кг і ще 4 дні через день по 6 мг/кг. Тварини споживали воду, насичену молекулярним воднем у концентрації 0,6 ppm, ad libitum. Евтаназію щурів проводили під тіопенталовим наркозом. Для дослідження використовували сироватку крові, в якій колориметричним методом визначали вміст відновленого глутатіону. Статистичну обробку даних виконували за допомогою пакета програмного забезпечення SPSS­22.

Результати й обговорення. Вміст відновленого глутатіону в сироватці крові щурів, які споживали водопровідну воду 30 тижнів упродовж моделювання КРР і насичену молекулярним воднем лише протягом 30 днів після моделювання КРР, був на 10 % більшим, ніж у тварин з КРР, які не споживали водневої води. У сироватці крові щурів з КРР, яким вводили 5-фторурацил, вміст відновленого глутатіону в кінці експерименту становив 0,85 ммоль/г протеїну, що на 32 % менше, ніж у тварин 1-ї (контрольної) групи, і на 22 %, ніж у щурів, які споживали водневу воду 30 днів після моделювання КРР. У сироватці крові щурів з КРР, яким вводили 5-фторурацил та які споживали воду, збагачену молекулярним воднем, 30 днів після моделювання КРР, він становив 1,02 ммоль/г протеїну, що на 10 % більше (р≤0,05), ніж у тварин з КРР, і на 17 %, ніж у щурів, яким вводили 5-фторурацил та які не споживали води, насиченої молекулярним воднем.

Висновки. Моделювання у щурів колоректального раку та застосування 5-фторурацилу призводять до зменшення вмісту відновленого глутатіону в сироватці їх крові, а споживання при цьому води, насиченої молекулярним воднем, сприяє достовірному збільшенню в них рівня цього антиоксиданта.

Посилання

Xi, Y., & Xu, P. (2021). Global colorectal cancer burden in 2020 and projections to 2040. Translational oncology, 14(10), 101174.

Sung, H., Ferlay, J., Siegel, R.L., Laver­sanne, M., Soerjomataram, I., Jemal, A., & Bray, F. (2021). Global cancer statistics 2020: GLOBOCAN estimates of incidence and mortality worldwide for 36 cancers in 185 countries. CA: a cancer journal for clinicians, 71(3), 209-249.

Yuan, Y., Xiao, W.W., Xie, W.H., Cai, P.Q., Wang, Q.X., Chang, H., ... & Gao, Y.H. (2021). Neoadjuvant chemoradiotherapy for patients with unresectable radically locally advanced colon cancer: a potential improvement to overall survival and decrease to multivisceral resection. BMC cancer, 21, 1-13.

Bujanda, L., Sarasqueta, C., Hijona, E., Hijona, L., Cosme, A., Gil, I., ... & Gastrointestinal Oncology Group of the Spanish Gastroenterological Association. (2010). Colorectal cancer prognosis twenty years later. World Journal of Gastroenterology: WJG, 16(7), 862.

Marini, H.R., Facchini, B.A., di Francia, R., Freni, J., Puzzolo, D., Montella, L., ... & Minutoli, L. (2023). Glutathione: Lights and shadows in cancer patients. Biomedicines, 11(8), 2226.

Valko, M., Leibfritz, D., Moncol, J., Cronin, M.T., Mazur, M., & Telser, J. (2007). Free radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. The international journal of biochemistry & cell biology, 39(1), 44-84.

Zaric, B.L., Macvanin, M.T., & Isenovic, E.R. (2023). Free radicals: relationship to human diseases and potential therapeutic applications. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology, 154, 106346.

Checconi, P., Limongi, D., Baldelli, S., Ciriolo, M.R., Nencioni, L., & Palamara, A. T. (2019). Role of glutathionylation in infection and inflamma­tion. Nutrients, 11(8), 1952.].

Hussain, S.P., Hofseth, L.J., & Harris, C.C. (2003). Radical causes of cancer. Nature Reviews Cancer, 3(4), 276-285.

Cabello, C.M., Bair 3rd, W.B., & Wondrak, G.T. (2007). Experimental therapeutics: targeting the redox Achilles heel of cancer. Current opinion in investigational drugs (London, England: 2000), 8(12), 1022-1037.

Lecane, P.S., Karaman, M.W., Sirisawad, M., Naumovski, L., Miller, R.A., Hacia, J.G., & Magda, D. (2005). Motexafin gadolinium and zinc induce oxidative stress responses and apoptosis in B-cell lymphoma lines. Cancer research, 65(24), 11676-11688.

Wang, J., & Yi, J. (2008). Cancer cell killing via ROS: to increase or decrease, that is the question. Cancer biology & therapy, 7(12), 1875-1884.

Estrela, J.M., Ortega, A., & Obrador, E. (2006). Glutathione in cancer biology and therapy. Critical reviews in clinical laboratory sciences, 43(2), 143-181.

Halliwell, B., & Gutteridge, J.M. (2015). Free radicals in biology and medicine. Oxford university press, USA.

Dalle-Donne, I., Rossi, R., Colombo, R., Giustarini, D., & Milzani, A. (2006). Biomarkers of oxidative damage in human disease. Clinical che­mistry, 52(4), 601-623.

Ballatori, N., Krance, S.M., Notenboom, S., Shi, S., Tieu, K., & Hammond, C. L. (2009). Glu­tathione dysregulation and the etiology and pro­gression of human diseases. Biol. Chem., 390, 191-214.

Singh, S., Khan, A. R., & Gupta, A.K. (2012). Role of glutathione in cancer pathophysiology and therapeutic interventions. J Exp Ther Oncol, 9(4), 303-316.

Afzal, S., Jensen, S.A., Vainer, B., Vogel, U., Matsen, J.P., Sørensen, J.B., ... & Poulsen, H.E. (2009). MTHFR polymorphisms and 5-FU-based adjuvant chemotherapy in colorectal cancer. Annals of oncology, 20(10), 1660-1666.

Longley, D.B., Harkin, D.P., & Johnston, P.G. (2003). 5-fluorouracil: mechanisms of action and clinical strategies. Nature reviews cancer, 3(5), 330-338.

Ohta, S. (2012). Molecular hydrogen is a novel antioxidant to efficiently reduce oxidative stress with potential for the improvement of mito­chondrial diseases. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-General Subjects, 1820(5), 586-594.

Pokotylo, O.O., Pokotylo, O.S., & Korda, M.M. (2023). Effects of biological action of molecular hydrogen. Medical and Clinical Chemistry, (2), 102-121. [in Ukrainian]

Hirano, S.I., Aoki, Y., Li, X.K., Ichimaru, N., Takahara, S., & Takefuji, Y. (2021). Protective effects of hydrogen gas inhalation on radiation-induced bone marrow damage in cancer patients: a retro­spective observational study. Medical Gas Re­search, 11(3), 104-109.

Runtuwene, J., Amitani, H., Amitani, M., Asakawa, A., Cheng, K.C., & Inui, A. (2015). Hydrogen-water enhances 5-fluorouracil-induced inhibition of colon cancer. PeerJ, 3, e859.

Perše, M., & Cerar, A. (2011). Morphological and molecular alterations in 1, 2 dimethylhydrazine and azoxymethane induced colon carcinogenesis in rats. BioMed Research International, 2011(1), 473964.

Kensara, O.A., El-Shemi, A.G., Moha­med, A.M., Refaat, B., Idris, S., & Ahmad, J. (2016). Thymoquinone subdues tumor growth and poten­tiates the chemopreventive effect of 5-fluorouracil on the early stages of colorectal carcinogenesis in rats. Drug design, development and therapy, 2239-2253.

de l’Europe, C. (1986). European Conven­tion for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes/Convention européenne sur la protection des ani­maux vertébrés utilisés à des fins expérimentales ou à d'autres fins scientifiques: [Strasbourg, 18. III. 1986]. Conseil de l'Europe Section des publications.

Vlizlo, V.V., Fedoruk, R.S. Ratych, I.B. (2012). Laboratory research methods in biology, ani­mal husbandry and veterinary medicine. Hand­book. Lviv: Spolom. [in Ukrainian].

Okeh, U.M. (2009). Statistical problems in medical research. East African Journal of Public Health, 6(1), 1-7.

De-Souza, A.S.C., & Costa-Casagran­de, T.A. (2018). Animal models for colorectal cancer. ABCD. Arquivos Brasileiros de Cirurgia Digestiva (São Paulo), 31(02), e1369.

Pokotylo, O.O., Pokotylo, O.S., & Korda, M.M. (2024). The effect of molecular hydrogen on oxi­dative modification of proteins in colorectal cancer in the experiment. Medical and Clinical Chemistry, (1), 11-17 [in Ukrainian].

Lv, H., Zhen, C., Liu, J., Yang, P., Hu, L., & Shang, P. (2019). Unraveling the potential role of glutathione in multiple forms of cell death in cancer therapy. Oxidative medicine and cellular longevity, 2019(1), 3150145.

Johnsen, H.M., Hiorth, M., & Klaveness, J. (2023). Molecular Hydrogen Therapy – A Review on Clinical Studies and Outcomes. Molecules, 28(23), 7785.

Sun, Q., Han, W., & Nakao, A. (2015). Biological safety of hydrogen. in Hydrogen Mole­cular Biology and Medicine. Springer: Dordrecht, The Netherlands. 35-48.

Basak, D., Uddin, M. N., & Hancock, J. (2020). The role of oxidative stress and its counter­active utility in colorectal cancer (CRC). Cancers, 12(11), 3336.

Boakye, D., Jansen, L., Schoettker, B., Jansen, E.H., Schneider, M., Halama, N., ... & Brenner, H. (2020). Blood markers of oxidative stress are strongly associated with poorer prognosis in colorectal cancer patients. International journal of cancer, 147(9), 2373-2386.

Slezák, J., Kura, B., Frimmel, K., Zálešák, M., Ravingerová, T., Viczenczová, C., ... & Tribulová, N. (2016). Preventive and therapeutic application of molecular hydrogen in situations with excessive production of free radicals. Physiol. Res, 65 (Suppl 1), S11-S28.

Koçer, M., & Nazıroğlu, M. (2013). Effects of 5-fluorouracil on oxidative stress and calcium levels in the blood of patients with newly diagnosed colorectal cancer. Biological trace element re­search, 155, 327-332.

Niu, B., Liao, K., Zhou, Y., Wen, T., Quan, G., Pan, X., & Wu, C. (2021). Application of glutathione depletion in cancer therapy: Enhanced ROS-based therapy, ferroptosis, and chemotherapy. Biomaterials, 277, 121110.

Zou, M., Hu, X., Xu, B., Tong, T., Jing, Y., Xi, L., ... & Liao, F. (2019). Glutathione S transferase isozyme alpha 1 is predominantly involved in the cisplatin resistance of common types of solid cancer. Oncology reports, 41(2), 989-998.

Cooper, A.J.L., & Hanigan, M.H. (2018). Metabolism of glutathione S-conjugates: multiple pathways. Comprehensive toxicology, 363.

Van Bladeren, P.J. (2000). Glutathione conjugation as a bioactivation reaction. Chemico-biological interactions, 129(1-2), 61-76.

##submission.downloads##

Опубліковано

2024-10-23

Як цитувати

Покотило, О. О., & Корда, М. М. (2024). РІВЕНЬ ВІДНОВЛЕНОГО ГЛУТАТІОНУ ПРИ КОЛОРЕКТАЛЬНОМУ РАКУ ЗА ВПЛИВУ 5-ФТОРУРАЦИЛУ І МОЛЕКУЛЯРНОГО ВОДНЮ. Медична та клінічна хімія, (3), 33–41. https://doi.org/10.11603/mcch.2410-681X.2024.i3.14913

Номер

Розділ

ОРИГІНАЛЬНІ ДОСЛІДЖЕННЯ