ВЗАЄМОЗВ’ЯЗОК МІЖ СКАРГАМИ, РІВНЕМ МЕЛАТОНІНУ ТА ДЕЯКИМИ ПОКАЗНИКАМИ СТАНУ АНТИОКСИДАНТНОЇ СИСТЕМИ Й АНГІОГЕНЕЗУ В ЖІНОК ІЗ ЛЕЙОМІОМОЮ МАТКИ

Автор(и)

DOI:

https://doi.org/10.11603/24116-4944.2024.1.14658

Ключові слова:

лейоміома матки, мелатонін, відновлений глутатіон, VEGF, перекисне окиснення ліпідів, антиоксидантна система

Анотація

Мета дослідження – встановити взаємозв’язок між скаргами, рівнем мелатоніну та деякими показниками стану антиоксидантної системи і ангіогенезу в жінок із лейоміомою матки.

Матеріали та методи. Обстежено 60 жінок репродуктивного віку з діагнозом «лейоміома матки» (дослідна група). Контрольну групу склали 20 практично здорових жінок тієї ж вікової групи. Вивчали концентрації мелатоніну та відновленого глутатіону, а також рівні фактора росту ендотелію судин VEGF у плазмі крові обстежених жінок. Порівняння між групами проводили з використанням t-тесту для неоднакових вибірок. Здійснювали розрахунки логістичної регресії між якісними (наявність чи відсутність описаних нижче клінічних симптомів) та кількісними (перераховані біохімічні показники) параметрами.

Результати дослідження та їх обговорення. Рівень мелатоніну в плазмі крові пацієнток, хворих на лейоміому матки, був вірогідно нижчий порівняно з рівнем даного гормону у практично здорових жінок: (111,01±18,5) ng/ml (в контролі (153,5±8,5) ng/ml, p<0,01). Концентрація відновленого глутатіону в плазмі крові жінок із лейоміомою була достовірно нижчою порівняно зі здоровими жінками ((0,77±0,13) мкмоль/л проти (1,02±0,14) мкмоль/л у контрольній групі, p<0,01). Рівень VEGF у пацієнток із лейоміомою матки був вірогідно вищий ((90,4±23,6) пг/мл) порівняно з контрольною групою ((35,1±8,3) пг/мл, p<0,01). При зниженні рівня мелатоніну в плазмі крові нижче 100,0 ng/ml у жінок репродуктивного віку, хворих на лейоміому матки, імовірність появи болісних менструацій складає 82 %, а при підвищенні концентрації відновленого глутатіону вище за 0,78 мкмоль/л шанс на появу рясних кров’янистих виділень під час менструації складає близько 67 %. Рівень VEGF у плазмі крові жінок із лейоміомою, вищий за 96,13 pg/ml, майже завжди, відповідно до наших даних, асоціюється з наявністю в анамнезі таких пацієнток самовільних викиднів.

Висновки. У пацієнток із лейоміомою матки спостережено знижену порівняно зі здоровими жінками активність антиоксидантної системи: в дослідній групі середній рівень мелатоніну в плазмі крові був вірогідно (p<0,01) нижчий, порівняно з контрольною групою (різниця склала 27,6 %), як і середній рівень у плазмі крові відновленого глутатіону (різниця склала 24,5 % при p<0,01 порівняно з контролем). У групі жінок із діагнозом «лейоміома матки» відмічали значне (в 2,58 раза) збільшення середньої концентрації VEGF у плазмі крові порівняно зі здоровими жінками (p<0,01), що свідчить про активізацію ангіогенезу при даному захворюванні. Взаємозв’язки між клінічними ознаками лейоміоми матки та дослідженими біохімічними показниками описано за допомогою інструментів логічної регресії.

Біографія автора

  • автор Б. В. Соколов, афіліація Буковинський державний медичний університет

    аспірант, ОКНП “Чернівецька обласна клінічна лікарня”, підрозділ гінекології, лікар гінеколог

Посилання

1. Baird, D.D., Dunson, D.B., Hill, M.C., Cousins, D., & Schectman, J.M. (2003). High cumulative incidence of uterine leiomyoma in black and white women: ultrasound evidence. American Journal of Obstetrics and Gynecology, 188(1), 100–107. DOI: https://doi.org/10.1067/mob.2003.99

2. Barjon, K., & Mikhail, L.N. (2024). Uterine Leiomyomata. Retrieved from: https://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK546680/

3. Xu, X., Kim, J.J., Li, Y., Xie, J., Shao, C., & Wei, J.J. (2018). Oxidative stress-induced miRNAs modulate AKT signaling and promote cellular senescence in uterine leiomyoma. Journal of Molecular Medicine, 96(10), 1095–1106. DOI: https://doi.org/10.1007/s00109-018-1682-1

4. Lin, L.C., Chang, H.Y., & Kuo, T.T. (2023). Oxidative stress mediates the inhibitory effects of Manzamine A on uterine leiomyoma cell proliferation and extracellular matrix deposition via SOAT inhibition. Redox Biology, 66, 102861. DOI: https://doi.org/10.1016/j.redox.2023.102861

5. Miyashita-Ishiwata, M., El Sabeh, M., Reschke, L.D., Afrin, S., & Borahay, M.A. (2022). Hypoxia induces proliferation via NOX4-mediated oxidative stress and TGF-β3 signaling in uterine leiomyoma cells. Free Radical Research, 56(2), 163–172. DOI: https://doi.org/10.1080/10715762.2022.2061967

6. Machado-Lopez, A., Simón, C., & Mas, A. (2021). Molecular and cellular insights into the development of uterine fibroids. International Journal of Molecular Sciences, 22(16), 8483. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms22168483

7. Ono, M., Qiang, W., Serna, V.A., et al. (2012). Role of stem cells in human uterine leiomyoma growth. PLoS One, 7(5), e36935. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0036935

8. Ali, M., Ciebiera, M., Vafaei, S., Alkhrait, S., Chen, H.Y., Chiang, Y.F., Huang, K.C., Feduniw, S., Hsia, S.M., & Al-Hendy, A. (2023). Progesterone signaling and uterine fibroid pathogenesis: molecular mechanisms and potential therapeutics. Cells, 12(8), 1117. DOI: https://doi.org/10.3390/cells12081117

9. Lv, M., Yu, J., Huang, Y., Ma, J., Xiang, J., Wang, Y., Li, L., Zhang, Z., & Liao, H. (2022). Androgen signaling in uterine diseases: new insights and new targets. Biomolecules, 12(11), 1624. DOI: https://doi.org/10.3390/biom12111624

10. Tal, R., & Segars, J.H. (2014). The role of angiogenic factors in fibroid pathogenesis: potential implications for future therapy. Human Reproduction Update, 20(2), 194–216. DOI: https://doi.org/10.1093/humupd/dmt042

11. Park, J.Y., Chae, B., & Kim, M.R. (2022). The potential of transforming growth factor-beta inhibitor and vascular endothelial growth factor inhibitor as therapeutic agents for uterine leiomyoma. International Journal of Medical Sciences, 19(12), 1779–1786. DOI: https://doi.org/10.7150/ijms.75203

12. Don, E.E., Middelkoop, M.A., Hehenkamp, W.J.K., Mijatovic, V., Griffioen, A.W., & Huirne, J.A.F. (2023). Endometrial angiogenesis of abnormal uterine bleeding and infertility in patients with uterine fibroids: a systematic review. International Journal of Molecular Sciences, 24(8), 7011. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms24087011

13. AlAshqar, A., Lulseged, B., & Mason-Otey, A. (2023). Oxidative stress and antioxidants in uterine fibroids: pathophysiology and clinical implications. Antioxidants, 12(4), 807. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox12040807

14. Borah, B.J., Yao, X., Laughlin-Tommaso, S.K., Heien, H.C., & Stewart, E.A. (2017). Comparative effectiveness of uterine leiomyoma procedures using a large insurance claims database. Obstetrics & Gynecology, 130(5), 1047–1056. DOI: https://doi.org/10.1097/AOG.0000000000002331

15. Xu, X., Kim, J.J., Li, Y., Xie, J., Shao, C., & Wei, J.J. (2018). Oxidative stress-induced miRNAs modulate AKT signaling and promote cellular senescence in uterine leiomyoma. Journal of Molecular Medicine, 96(10), 1095–1106. DOI: https://doi.org/10.1007/s00109-018-1682-1

16. Lin, L.C., Chang, H.Y., & Kuo, T.T. (2023). Oxidative stress mediates the inhibitory effects of Manzamine A on uterine leiomyoma cell proliferation and extracellular matrix deposition via SOAT inhibition. Redox Biology, 66, 102861. DOI: https://doi.org/10.1016/j.redox.2023.102861

17. Shen, C., Li, Y., Chen, Y., Huang, L., Zhang, F., & Wu, W. (2020). Melatonin prevents the binding of vascular endothelial growth factor to its receptor and promotes the expression of extracellular matrix-associated genes in nucleus pulposus cells. Experimental and Therapeutic Medicine, 20(5), 106. DOI: https://doi.org/10.3892/etm.2020.9227

18. Cheng, J., Yang, H.L., Gu, C.J., Liu, Y.K., Shao, J., Zhu, R., He, Y.Y., Zhu, X.Y., & Li, M.Q. (2019). Melatonin restricts the viability and angiogenesis of vascular endothelial cells by suppressing HIF-1α/ROS/VEGF. International Journal of Molecular Medicine, 43(2), 945–955. DOI: https://doi.org/10.3892/ijmm.2018.4021

19. Lin, L.W., Wang, S.W., Huang, W.C., Huynh, T.K., Lai, C.Y., Ko, C.Y., Fong, Y.C., Lee, J.J., Yang, S.F., & Tang, C.H. (2023). Melatonin inhibits VEGF-induced endothelial progenitor cell angiogenesis in neovascular age-related macular degeneration. Cells, 12(5), 799. DOI: https://doi.org/10.3390/cells12050799

20. Ahmad, S.B., Ali, A., & Bilal, M. (2023). Melatonin and health: insights of melatonin action, biological functions, and associated disorders. Cellular and Molecular Neurobiology, 43(6), 2437–2458. DOI: https://doi.org/10.1007/s10571-023-01324-w

21. Tejchman, K., Kotfis, K., & Sieńko, J. (2021). Biomarkers and mechanisms of oxidative stress—last 20 years of research with an emphasis on kidney damage and renal transplantation. International Journal of Molecular Sciences, 22(15), 8010. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms22158010

22. Tejchman, K., Sierocka, A., & Kotfis, K. (2021). Assessment of oxidative stress markers in hypothermic preservation of transplanted kidneys. Antioxidants, 10(8), 1263. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox10081263

23. Dennis, J.M., & Witting, P.K. (2017). Protective role for antioxidants in acute kidney disease. Nutrients, 9(7), 718. DOI: https://doi.org/10.3390/nu9070718

24. Wangsanut, T., & Pongpom, M. (2022). The role of the glutathione system in stress adaptation, morphogenesis and virulence of pathogenic fungi. International Journal of Molecular Sciences, 23(18), 10645. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms231810645

25. Sokolov, V., Berbets, A., Shashi, K.Y., & Yuzko, O. (2024). Levels of melatonin and some indicators of angiogenesis, antioxidant system and lipid peroxidation in blood plasma in women with uterine leiomyoma. Cell Organ Transplantology, 12(1). DOI: https://doi.org/10.22494/cot.v12i1.161

26. Travina, O.V. (1955). Guide to Biochemical Research. Medgiz Publ., 250–255.

27. Kumar, R., & Indrayan, A. (2011). Receiver operating characteristic (ROC) curve for medical researchers. Indian Pediatrics, 48(4), 277–287. DOI: https://doi.org/10.1007/s13312-011-0055-4

28. McMillin, M., DeMorrow, S., & Glaser, S. (2017). Melatonin inhibits hypothalamic gonadotropin-releasing hormone release and reduces biliary hyperplasia and fibrosis in cholestatic rats. American Journal of Physiology-Gastrointestinal and Liver Physiology, 313(5), G410–G418. DOI: https://doi.org/10.1152/ajpgi.00421.2016

29. Boutin, J.A., Kennaway, D.J., & Jockers, R. (2023). Melatonin: facts, extrapolations and clinical trials. Biomolecules, 13(6), 943. DOI: https://doi.org/10.3390/biom13060943

30. Chiang, Y.F., Chen, H.Y., & Ali, M. (2021). The role of cell proliferation and extracellular matrix accumulation induced by food additive butylated hydroxytoluene in uterine fibroids. Nutrients, 13(9), 3074. DOI: https://doi.org/10.3390/nu13093074

Завантаження

Опубліковано

2024-04-15

Номер

Розділ

Акушерство та гінекологія

Як цитувати

ВЗАЄМОЗВ’ЯЗОК МІЖ СКАРГАМИ, РІВНЕМ МЕЛАТОНІНУ ТА ДЕЯКИМИ ПОКАЗНИКАМИ СТАНУ АНТИОКСИДАНТНОЇ СИСТЕМИ Й АНГІОГЕНЕЗУ В ЖІНОК ІЗ ЛЕЙОМІОМОЮ МАТКИ. (2024). Актуальні питання педіатрії, акушерства та гінекології, 1, 31-39. https://doi.org/10.11603/24116-4944.2024.1.14658