ПРО- ТА АНТИПЕРОКСИДНІ ПРОЦЕСИ У СИРОВАТЦІ КРОВІ ЩУРІВ ПРИ ЗАГОЄННІ ПОВНОШАРОВИХ ВИРІЗАНИХ ЛІНІЙНИХ РАН
DOI:
https://doi.org/10.11603/1811-2471.2026.v.i2.16206Ключові слова:
повношарові вирізані лінійні рани, меланін, супероксиддисмутаза, каталаза, дієнові кон’югати, ТБК-активні продукти, альдопохідні, кетопохідніАнотація
РЕЗЮМЕ. Проблема загоєння ран пов’язана з рядом причин: хірургічними розрізами, травмами, пораненнями у війнах, старінням населення, зростанням рівнів ожиріння та цукрового діабету. Існуючі методи лікування є відносно ефективними, тому існує потреба в більш детальному вивченні патогенезу захворювання та пошуку природних сполук для пришвидшення загоєння ран.
Мета дослідження – з’ясувати стан про- та антиоксидантної системи щурів при загоєнні повношарових вирізаних лінійних ран, оброблених препаратом меланіну.
Матеріал і методи. Дослідження проводили на білих нелінійних щурах-самцях (n=40). Тварин було поділено на 3 групи. 1-а група – інтактний контроль – група здорових щурів без моделювання ран; 2-а група – у 4-місячних щурів моделювали повношарові вирізані лінійні рани, які нічим не обробляли; 3-я група – у 4-місячних щурів моделювали повношарові вирізані лінійні рани та щоденно їх обробляли гелем карбополу з меланіном (0,5 %). Стан системи антиоксидантного захисту організму оцінювали за активністю супероксиддисмутази та каталази. Інтенсивність вільнорадикальних процесів оцінювали за накопиченням дієнових кон’югатів, ТБК-активних продуктів і Шифових основ.
Результати. Встановлено, що у групі тварин із різаними ранами в сироватці крові зростають рівні дієнових кон’югатів, ТБК-активних продуктів і Шифових основ, епітелізація ранової поверхні проходить після 14-ї доби. Обробка ранової поверхні препаратом меланіну пришвидшує епітелізацію на три доби та призводить до зниження рівнів дієнових кон’югатів, ТБК-активних продуктів і Шифових основ до меж норми в інтактних тварин. Супероксиддисмутазна активність у сироватці крові тварин із різаними ранами знижується, однак при обробці ран препаратом меланіну вона зростає в бік контрольних значень. Каталазна активність, навпаки, зростає, але при обробці ран препаратом меланіну знижується в бік контрольних значень. Вміст продуктів окисної модифікації білків – альдо- та кетопохідних, як нейтрального, так і основного характеру у тварин із різаними ранами зростає, однак при обробці ран препаратом меланіну ці показники наближаються до норми в інтактних тварин.
Висновки. При різаних ранах у щурів у сироватці крові зростає вміст продуктів пероксидації ліпідів. Обробка ранових поверхонь препаратом меланіну пришвидшує загоєння ран і приводить практично до повної нормалізації показників пероксидації ліпідів. У сироватці крові при різаних ранах знижується активність супероксиддисмутази. Обробка ран препаратом меланіну призводить до пришвидшення повної епітелізації ранової поверхні та зростання активності ферменту в бік контрольних значень інтактних тварин. У сироватці крові щурів із вирізаними лінійними ранами зростає рівень окисно-модифікованих білків. При використанні препарату меланіну у щурів із різаною раною відбувається часткове відновлення показників білкової модифікації.
Посилання
Singh S, Young A, McNaught C-E. The physiology of wound healing. Surgery (Oxford). 2017;35(9):473-7. DOI: 10.1016/j.mpsur.2017.06.004. DOI: https://doi.org/10.1016/j.mpsur.2017.06.004
Rodrigues M, Kosaric N, Bonham CA, Gurtner GC. Wound Healing: A Cellular Perspective. Physiol Rev. 2019;99:665-706. DOI: 10.1152/physrev.00067.2017.
Mamun AA, Shao C, Geng P, Wang S, Xiao J. Recent advances in molecular mechanisms of skin wound healing and its treatments. Front Immunol. 2024;15:1395479. DOI: 10.3389/fimmu.2024.1395479 DOI: https://doi.org/10.3389/fimmu.2024.1395479
Rodrigues M, Kosaric N, Bonham CA, Gurtner GC. Wound healing: A cellular perspective. Physiol Rev. 2019;99:665-706. DOI: 10.1152/physrev.00067.2017 DOI: https://doi.org/10.1152/physrev.00067.2017
Tottoli EM, Dorati R, Genta I, Chiesa E, Pisani S, Conti B. Skin wound healing process and new emerging technologies for skin wound care and regeneration. Pharmaceutics. 2020;12:1-30. DOI: 10.3390/pharmaceutics 12080735 DOI: https://doi.org/10.3390/pharmaceutics12080735
Sorg H, Tilkorn DJ, Hager S, Hauser J, Mirastschijski U. Skin wound healing: an update on the current knowledge and concepts. Eur Surg Res. 2017;58:81-94. DOI: 10.1159/ 000454919 DOI: https://doi.org/10.1159/000454919
Sinno H, Prakash S. Complements and the wound healing cascade: an updated review. Plast Surg Int. 2013;2013:1-7. DOI: 10.1155/2013/146764 DOI: https://doi.org/10.1155/2013/146764
Díaz-García D, Filipová A, Garza-Veloz I, Martinez-Fierro ML. A beginner’s introduction to skin stem cells and wound healing. Int J Mol Sci. 2021;22:11030. DOI: 10.3390/ijms222011030 DOI: https://doi.org/10.3390/ijms222011030
Wang Z, Wang Y, Bradbury N, Bravo CG, Schnabi B, Di Nardo A. Skin wound closure delay in metabolic syndrome correlates with SCF deficiency in kerationocytes. Sci Rep. 2020;10(1):21732. DOI: 10.1038/s41598-020-78244-y DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-020-78244-y
Solano F. Photoprotection and Skin Pigmentation: Melanin-Related Molecules and Some Other New Agents Obtained from Natural Sources. Molecules. 2020;25(7): 1537. DOI: 10.3390/molecules25071537. DOI: https://doi.org/10.3390/molecules25071537
Taburets OV, Morgaienko OO, Kondratyuk TO, Beregova TV, Ostapchenko LI. The Effect of "Melanin-Gel" on the Wound Healing. Research Journal of Pharmaceutical, Biological and Chemical Sciences (RJPBCS). 2016;7(3):2031-38.
Diaz DFZ, Busch L, Kroger M, Klein AL, Lohan SB. et al. Significance of melanin distribution in the epidermis for the protective effect against UV light. Scientific Reports. 2024;14:3488. DOI: 10.1038/s41598-024-53941-0. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-024-53941-0
Mucha M, Skrzydlewska E, Gegotek A. Natural protection against oxidative stress in human skin melanocytes. Commun. Biol. 2025;8:1283. DOI: 10.1038/s42003-025-08725-1. DOI: https://doi.org/10.1038/s42003-025-08725-1
Weydert CJ, Cullen JJ. Measurement of superoxide dismutase, catalase, and glutathione peroxidase in cultured cells and tissue. Nat Protoc. 2010;5(1):51-66. DOI:10.1038/nprot.2009.197. DOI: https://doi.org/10.1038/nprot.2009.197
Amft J, Meissner PM, Steffen-Heins A, Hasler M, Stöckmann H, Schwarz K. Interlaboratory study on lipid oxidation during accelerated storage trials with rapeseed and sunflower oil analyzed by conjugated dienes as primary oxidation products. European Journal of Lipid Science & Technology. 2023;125:e2300067. DOI: 10.1002/ejlt.202300067 DOI: https://doi.org/10.1002/ejlt.202300067
Katsanidis E, Zampouni K. Development of a novel steam distillation TBA test for the determination of lipid oxidation in meat products. Food. 2023;12(2):359. DOI: 10. 3390/foods12020359. DOI: https://doi.org/10.3390/foods12020359
Rice-Evans CA, Diplock AT, Symons MCR. Techniques in free radical research Amsterdam:Elsevier. 1991. 309 p.
Taburets OV, Dvorshchenko KO, Vereshchaka VV, Beregova TV, Ostapchenko LI. [Okyslyuval'na modyfikatsiya bilkiv syrovatky krovi za umov modelyuvannya posichenoyi ploskoyi rany u shchuriv] Oxidative modification of blood serum proteins under conditions of modeling of an excised flat wound in rats. Bulletin of Problems of Biology and Medicine. 2017;3(1):219-23. Ukrainian.
Bilgen F, Ural A, Kurutas EB, Bekerecioglu M. The effect of oxidative stress and Raftlin levels on wound healing. Int Wound J. 2019;16(5):1178-84. DOI: 10.1111/iwj.13177. DOI: https://doi.org/10.1111/iwj.13177
Comino-Sanz IM, López-Franco MD, Castro B, Pancorbo-Hidalgo PL. The Role of Antioxidants on Wound Healing: A Review of the Current Evidence. J Clin Med. 2021;10(16):3558. DOI: 10.3390/jcm10163558. DOI: https://doi.org/10.3390/jcm10163558
Kurahashi T, Fujii J. Roles of Antioxidative Enzymes in Wound Healing. Journal of Developmental Biology. 2015;3(2):57-70. DOI:10.3390/jdb3020057 DOI: https://doi.org/10.3390/jdb3020057
Cano Sanchez M, Lancel S, Boulanger E, Neviere R. Targeting Oxidative Stress and Mitochondrial Dysfunction in the Treatment of Impaired Wound Healing: A Systematic Review. Antioxidants (Basel). 2018;7(8):98. DOI: 10.3390/antiox7080098. DOI: https://doi.org/10.3390/antiox7080098
Cai Z, Yan LJ. Protein Oxidative Modifications: Beneficial Roles in Disease and Health. J Biochem Pharmacol Res. 2013;1(1):15-26.